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                丁基-琼脂糖凝胶FF

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                详细说明

                丁基-琼脂糖凝胶FF
                丁基-琼脂糖凝胶FF

                品    名:丁基-琼脂糖凝胶FF(Butyl Sepharose FF)

                目 录 号:NRPB33L、NRPB33S(预装柱)

                规    格:20 ml,100 ml,1L,1 ml预装柱,5 ml预装柱,10 ml预装柱

                贮    存:20%乙醇,2~8℃冰箱保存。

                运    输:2~25℃、常压、避光。

                保 质 期:5年。

                相关介绍: 

                      丁基-琼脂糖凝胶FF是一种将丁基键合在琼脂糖凝胶微球上形成的较弱疏水性疏水层析分离介质。该产品保」留了琼脂糖极好的亲水性及大网架结构,与生物活性大分子有很≡好的相容性,具有载量高、非特异性吸附少▆、流速快等特点,广泛用于具有一定疏水性能的蛋白质、多肽等生物大分子的实验室规ω模制备和№生物制药、生物工程的工业化制备,典型应用如重组人粒巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)、粒细胞集落刺激因╳子(G-CSF)、人集落刺激因子(M-CSF)、表皮◆生成因子(EGF)、生长激素(GH)的生产以及单克隆抗体的纯化。

                技术指标:

                外观

                乳白色半透明凝♂胶状微球

                基质

                6%交联琼脂糖

                配体

                4碳链;-(CH2)3CH3

                配体密度

                25 μmol/ml

                蛋白质载量

                ~30 mg BSA/ml

                最大流速

                700 cm/h

                推荐流速

                100 cm/h

                粒径范围

                45~165μm

                耐反压

                0.3 MPa

                工作温度

                4~40℃

                耐热

                pH7水中,120℃灭菌30 min

                pH稳定性

                3~13(长时间);2~14(短时间)

                化学稳定性

                在常用水相缓冲液、1 M氢氧化钠、8 M尿素、6 M盐酸胍和70%乙◣醇中稳定。

                保存条件

                +2~8℃保存于20%乙醇溶液中

                 

                使用方法:

                  1. 装柱

                  1.1 根据分离目标的性质配制初始缓冲液(平衡液)和洗脱缓冲液。

                  1.2 将∑凝胶抽干,并用蒸馏水洗涤2次去除保存时的乙醇,用蒸馏水配成匀浆并脱气。

                  1.3 将层析柱垂直固定,底端用水或缓冲液润湿并保持一段液位。

                  1.4 用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入●柱内,使凝胶在柱内自由沉降。

                  1.5 连结好柱子@顶端活动柱头,打开蠕动泵,让缓冲液用〒操作流速流过5个柱体积,再使用1.5倍的操作流速流过5个柱体积,调ξ 节适配柱头,使其尽量贴近胶面,最后用2~3个柱体积的缓冲液平衡柱子。

                  注意:(1)所有操作过程不能引入气泡,保证装胶的均匀度。(3)如无条件做1.2步骤,填料层有气泡,可进行2次装柱,去除保存的乙醇和气泡。(4)乙醇等试剂配制的溶液需要脱气。

                  2. 平衡

                  将平衡缓冲液以操作流速平衡层析柱,观察检》测器的变化,直到电导率、pH值等参数不变。

                  3. 上样

                  切换转换阀进行上样,上样量根据样品的性质和层析介质的量进行选择,也可进行通过线性实验找到最佳ξ上样量。

                样品的预处理:置换缓冲液,加盐,澄清过滤(0.45μm、0.22 μm)等。

                  4. 冲洗

                  用2~3个柱体积的平衡缓冲◎液冲洗上样后的层析柱,观察检测器的变化,直到电导率、pH值等参数不变,此时未交换的组分被清洗出去。

                  5. 洗脱

                  疏水层析柱的洗脱可用恒定洗脱、梯度洗脱或者阶跃洗脱。一般推荐使用降低盐浓度的梯度洗脱,亦可根据实际情况添加有机溶剂进行洗脱。

                  6. 再生

                  用蒸馏水按操作流速冲洗3~5个柱体积,接着用平衡液洗到平衡3~5个柱体积。

                  再生时若有失活蛋白质或脂类物质在洗不掉,可用在位清洗法(CIP)除去。

                  7. 在位清洗(CIP)

                  对于强结合的蛋白质或脂类物质,可采用以下流程进行在位清洗:1 M NaOH洗2个柱体积,8 M尿素洗2个柱体积, 30%异丙醇洗2个柱体积,平衡缓冲液洗2个柱体积。

                在位清洗可有效去除介质上的杂质,反向清洗〇效果更佳。如需要去除内毒素热①原,可以在50 cm/h速度下,1 M NaOH清洗1~2 h。

                 

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