磁¤珠法植物基因组DNA提取试○剂盒使用说明书
概述
本试剂盒采用具有独特分离作用的磁珠和缓冲液系统，从样品中分离纯化高质量基因组DNA，特殊包被的磁珠，在一定条件下对目的DNA具有很强的亲和力，而当条件改变时，磁珠释放吸附的DNA，能够达到快速分离纯化DNA的目的。整个过程不涉及有毒试剂，安全、便捷、提取的DNA纯度高。使用本试剂盒纯化的基因组DNA (OD260-OD320)/(OD280-OD320)均在1.7～2.0之间，可以应用到各类下游分子生物学实验。
| Production.no | 名称 | 规格 | 储存条件 | 保质期 |
| HRZW-010 | 磁珠法植物基因组DNA提取↘试剂盒 | 100T | 4℃ | 180天 |
适用范围
从植物组织中▓提取基因组DNA，适用于核酸自动卐化提取平台。
试剂盒包装及组成
| 试剂盒组成 | 数量 |
| Buffer A | 60 ml×1瓶 |
| Buffer B | 1.5 ml×1瓶 |
| Buffer C | 1.5 ml×1瓶 |
| 磁珠Ψ 结合液 | 25 ml×1瓶 |
| 洗涤液Ⅰ | 50 ml×1瓶 |
| 洗涤液Ⅱ | 30 ml×1瓶，使用前加入80 ml无水乙醇，混匀 |
| 洗脱液 | 10 ml×1瓶 |
| 使用说明书 | 1份 |
注意事项
1.Buffer A低温储存可能会出现白色絮状漂浮物，使用前在恒温水箱中温育至白色沉淀完全溶∞解，不影响使用效果。
2.Buffer B 4℃保存，可能会析出白色粉末状沉淀，使用前混合均匀，不影响使用效果。
3.磁珠结合液用前一定要充分混匀。
4.如果〖下游实验对RNA污染比较敏感，可在裂解时加1µl RNaseA（10mg/ml）。
5.如果是干材料，取样量为10～20mg，适当延长裂解◣时间；如果材料是种子（可用粉碎机粉碎至☆粉末状），加入600µl
Buffer A，15 µl Buffer B、15 µl Buffer C，裂解时间为30min，其他操作不变▅。
6.如果同等取样量下欲得到更多DNA可以增加洗脱次数（洗脱次数♂最好不要超过3次），也可以适当延长裂解时间。
操作步骤
1.裂解
取新鲜→植物组织25～100mg，与研钵中稍加研磨。加入400～600µl Buffer A、5 µl Buffer B、10 µl Buffer C，研磨均匀，然后转移至1.5ml EP管中，混合均匀（可用卐漩涡振荡器，1200～1800rpm）。然后把EP管置于恒温水箱↑中65℃温育15～30min。
2.结合
将EP管从温※育设备中取出，12000r离心10min。取200 µl上清，加入振荡混匀的磁珠结合液250µl，颠倒混匀5min。将EP管置于磁力架上进行磁分离，吸弃废液，（吸净管盖及管底残↙液）。
3.洗涤
⑴ 加入500µl洗涤液Ⅰ，点振5～10次（若有团状或丝状物可增」加点振次数及力度），然后↓磁分离，吸净管盖及管底的残液；
⑵ 加入500µl洗涤液Ⅱ，点振5～10次（若有团状或丝状物◤可增加点振次数及力度），然后磁分离，吸净管盖及管底的残液；
⑶ 重复步骤⑵一次，室温下开盖干燥5min。
4.洗脱
加入100µl洗脱液，缓慢□抽吸混匀，65℃温浴10min。每隔2～3min轻摇EP管几下混匀。然后磁分离，小心吸取上清液至新①的EP管中，进行下游实验。
