醋酸纤维薄膜电泳(cellulose acetate membrance electrophoresis)以醋酸纤维薄膜为支持物。它是纤维素的醋酸酯，由纤维素的羟基经乙酰化而制成。它溶于丙酮等有机溶液中，即可涂布成均一细密的微孔薄膜，厚度以0.1 mm~0.15 mm 为宜。太厚吸水性差，分离效果不好;太薄则膜片缺少应有的机械强度则易碎。

　　应用

　　醋酸纤维薄膜电泳操作简单、快速、廉价。已经广泛用于血清蛋白，血红蛋白，球蛋白，脂蛋白，糖蛋 白，甲胎蛋白，类固醇激素及同工酶等的分离分析中，尽管它的分辨力比聚丙酰胺凝胶电泳低，但它具▼有简单，快『速等优点。

　　特点

　　1. 醋酸纤维薄膜对蛋白质样品吸附极少，无“拖尾”现象，染色后背景能完全︼脱色，各种蛋白质染色带分离清晰，因而提高了测定的精确性。

　　2. 快速省时。由于醋酸纤维薄膜亲水性较滤纸小，薄膜中所容纳的缓冲液也较少，电〗渗作用小，电◥泳时大部分电流是由样品传导的，所以分离速度快，电泳时∮间短，一般电泳45~60 min 即可，加上染色，脱色，整个电泳完成仅需90 min 左右。

　　3. 灵敏度高，样品用量少。 血清蛋白仅需2μl血清，甚至加样体积♂少至0.1 μl，仅含5 μg 蛋白样品也可得到清晰的分离带。临床医学检验利用⊙这一点，检测在病理情况下微量异常蛋白的改变。

　　4. 应用面广。某】些蛋白在纸上电泳不易分离，如胎儿甲种球□蛋白，溶菌酶，胰岛素，组蛋白等用醋酸纤维薄膜电泳能较好地分离。

　　5. 醋酸纤维薄◢膜电泳染色后，经冰乙酸，乙醇混合液或其它溶液浸泡后可制成透明的干板，有利于扫描定量及长期保存。

　　6. 醋酸纤维薄膜电泳与聚丙烯酰胺凝胶电泳相ぷ比，操作简单，但分离效ㄨ果不太好。如血清蛋白在醋酸纤维素薄膜电泳中，只╳能分离出5~6条区带，而聚丙烯酰胺凝胶电泳可分离出数10条区带。

　　注意事项

　　1. 醋酸纤维薄膜的预处理

　　市售醋酸纤维薄膜均为干膜片，薄膜的浸润】与选膜是电泳成败的重要关键之一。将干膜♀片漂浮于电极缓冲液表面，其目的是选择∩膜片厚薄及均匀度，如漂浮15 s~30 s 时，膜片吸◣水不均匀，则有白斑点或条纹，这提示膜片厚薄不匀，应舍去不用，以免造成电泳后区带扭曲，界线不清，背景脱色困难，结果难以重复。由于醋酸纤◤维薄膜亲水性比纸小，浸泡30 min 以上是保证膜片上有一定量的缓冲ぷ液，并使其恢复到原来多孔的网状结构。最好是让漂浮于缓冲液∏的薄膜吸满缓冲液后自然下沉，这样可将膜片上聚集的小气泡赶着走。点样时，应将膜片表面多余的缓冲液用滤纸吸去，以免缓冲液太多引起样品扩█散。但也不能吸得太干，太干则样品不易进入薄膜的网孔内，而造成电泳起始点参差不齐，影响分离效果◣。吸水量以不干不湿为宜。为防止指纹感染，取膜时，应戴指套或用镊子。

　　2. 缓冲液的↘选择

　　醋酸纤维薄膜电泳常选用pH8.6巴比妥溶液，其浓度为0.05 mol/L~0.09 mol/L。选择何种浓度与样品及薄膜的薄厚有关。选择时，先初步定下某一浓︻度，如电泳槽两极之间的膜⌒　长度为8 cm~10 cm，则需电压25 V/cm膜长，电流强度为0.4 mA/cm~0.5 mA/cm膜宽。当电泳达∑不到或超过这个值时，则应增加缓冲液浓度或进行稀释。缓冲液浓度过低，则区带泳动速度快，并由于扩□　散变宽;缓冲液浓度过高，则区带■泳动速度慢，区带分布过于集中不易分辨。

　　3. 加样量

　　加样品的多少与△电泳条件、样品的性质、染色方法与检测手段灵敏度密切相关。作为一般原则，检测←方法越灵敏，加样量则越少，对分离更有利。如加样量过大，则电泳后●区带分离不清楚，甚至〗互相干扰，染色也较费时。如电泳后用洗脱法定量↑时，每厘米加样线上需加样品0.1 μl~0.5 μl约相当于5 μg~1000 μg蛋白。血清蛋白常规电泳分离时，每厘米加样线加样量不超过1 μl，相当于60μg~80μg的蛋白质。但糖蛋¤白和脂蛋白电泳时，加样量则应多些。对每种样品加样量均应先作预□　实验加以选择。点样好坏是获得理想图谱的重要环节之一，以印章法々加样时，动作应轻、稳，用力不能太重，以免将薄膜弄坏或印出凹陷而影响电泳区带分离效果。

　　4. 电量的∞选择

　　电泳过程应选择合适的电流强度，一般电流强度为0.4 mA/cm~0.5 mA/cm宽膜为宜。电流强度高，尤其在温度较高的环境♀中，可引起蛋白质变性或由于热效▂应引起缓冲液中水分蒸发，使缓冲液☆浓度增加，造成膜片干涸。电流过低，则样品泳动速度慢且易扩散。

　　5. 染色液的选择

　　对醋酸纤维薄膜电泳后染色应根据样品的特点加以▓选择。其原则是染料对被】分离样品有较强的着色力，背景易脱色;应尽◥量采用水溶性染料，不宜选择醇溶性染料，以免引起醋酸纤维素膜溶解。应控制染色时间。时间长，薄膜※底色深不易脱去;时间短，着色浅不宜区分，或造成条带染色不均，必要时可进行复染。

　　6. 透明及≡保存

　　透明液应临◥用前配制，以免冰乙酸及乙醇挥发影响透明效果。这些⌒试剂最好选用分析纯。透明前，薄膜应完全干燥。透明时间应掌握好，如在透明乙液中浸泡时间太长则薄膜溶解，太短则透明度不佳。透明后㊣的薄膜完全干燥后才浸入石蜡中，使█薄膜软化。如有水，则液体石蜡不易浸入，薄膜不易平√展。