制备基因组DNA是进行基因结构和功能研究的重要步骤，通常要求得到的片段的长度不小于100-200kb。在DNA提取过程中应尽量避免使DNA断裂和降解的各种因素，以保证DNA的完整性，为后续的实验打下基础。一般真核细胞基因组DNA有107-9bp，可以从新鲜组织、培养细胞或低温保存的组织细胞中提取，常是采用在EDTA以及SDS等试剂存在下用蛋白酶K消化细胞，随后用酚抽提而实现的。这一方法获得的DNA不仅经酶切后可用于Southern分析，还可用于PCR的模板、文库构建等实验。

　　根据材料来源不同，采取不同的材料处理方法，而后的DNA提取方法大体类似。

　　但都应考虑以下两个原则：

　　(1)防止和抑制DNase对DNA的降解;

　　(2)尽量减少对溶液中DNA的机械剪切破坏。

　　一、试剂准备

　　1.TE: 10mM Tris-HCl (pH 7.8); 1mM EDTA (pH 8.0)。

　　2.TBS: 25mM Tris-HCl (pH 7.4); 200mM NaCl; 5mM KCl。

　　3.裂解缓冲液：250mM SDS; 使用前加入蛋白酶K至100mg/ml。

　　4.20% SDS

　　5.2mg/ml蛋白酶K

　　6.Tris饱和酚(pH 8.0)、酚/氯仿(酚∶氯仿=1∶1)、氯仿

　　7.无水乙醇、75%乙醇

　　二、操作步骤

　　(一)材料处理

　　1.新鲜或冰冻组织处理：

　　⑴ 取组织块0.3-0.5cm3, 剪碎，加TE 0.5ml，转移到匀浆器中匀浆。

　　⑵ 将匀浆液转移到1.5ml离心管中。

　　⑶ 加20% SDS 25 ml，蛋白酶K (2mg/ml) 25 ml，混匀。

　　⑷ 60°C水浴1-3hr。

　　2.培养细胞处理：

　　⑴ 将培养细胞悬浮后，用TBS洗涤一次。

　　⑵ 离心4000g×5min，去除上清液。

　　⑶ 加10倍体积的裂解缓冲液。

　　⑷ 50-55°C水浴1-2hr。

　　(二)DNA提取

　　1. 加等体积饱和酚至上述样品处理液中，温和、充分混匀3min。

　　2. 离心5000g×10min，取上层水相到另一1.5ml离心管中。

　　3. 加等体积饱和酚，混匀，离心5000g×10min，取上层水相到另一管中。

　　4. 加等体积ぷ酚/氯仿，轻轻混匀，离心5000g×10min，取上层水相到另一管中。如水相仍不澄清，可重复此步骤数次。

　　5. 加等体积氯仿，轻轻混匀，离心5000g×10min，取上层水相到另一管中。

　　6. 加1/10体积的3M醋酸钠(pH 5.2)和2.5倍体积的无水乙醇，轻轻倒置混匀。

　　7. 待絮状物出现后，离心5000g×5min，弃上清液。

　　8. 沉淀用75%乙醇洗涤，离心5000g×3min ，弃上清液。

　　9. 室温下挥发乙醇，待沉淀将近透明后加50-100ml TE溶解过夜。

　　(三)DNA定量和电泳检测

　　1.DNA定量：

　　DNA在260nm处有最大的吸收峰，蛋白质在280nm处有最大的吸收峰，盐和小分子则集中在230nm处。因此，可以用260nm波长进行分光测定DNA浓度，OD值为1相当于大约50μg/ml双链DNA。如用1cm光径，用 H2O稀释DNA样品n倍并以H2O为空白对照，根据此＠ 时读出的OD260值即可计算出样品稀释前的浓度：DNA(mg/ml)=50×OD260读数×稀释倍数/1000。

　　DNA纯品的OD260/OD280为1.8，故根据OD260/OD280的值可以估计DNA的纯度。若比值较高说明含有RNA，比值较低说明有残余蛋白质存在。OD230/OD260的比值应在0.4-0.5之间，若比值较高说明有残余的盐存在。

　　2.电泳检测：

　　取1μg基因组DNA用行0.8%琼脂糖凝胶上电泳，检测DNA的完整性，或多个样品的浓度是否相同。电泳结束后在点样孔附近应有单一的高分子量条带。

　　三、注意事项

　　1. 所有用品均需要高温高压，以灭活残余的DNA酶。

　　2. 所有试剂均用高压灭菌双蒸水配制。

　　3. 用大口滴管或吸头操作，以尽量减少打断DNA的可能性。

　　4. 用上述方法提取的DNA纯度可以满足一般实验(如Southern 杂交、PCR等)目的。如要求更高，可进行DNA纯化。

　　质粒DNA的碱裂解法提取与纯化

　　细菌质粒是一类双链、闭环的DNA，大小范围从1kb至200kb以上不等。各种质粒都是存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份，通常情况下可持续稳定地处于染色体外的游离状态，但在一定条件下也会可逆地整合到寄主染色体上，随着染色体的复制而复制，并通过细胞分裂传递到后代。

　　质粒已成为目前最常用的基因克隆的载体分子，重要的条件是可获得大量纯化的质粒DNA分子。目前已有许多方法可用于质粒DNA的提取，本实验采用碱裂解法提取质粒DNA。

　　碱裂解法是一种应用最为广泛的制备质粒DNA的方法，其基本原理为：当菌体在NaOH和SDS溶液中裂解时，蛋白质与DNA发生变性，当加入中和液后，质粒DNA分子能够迅速复性，呈溶解状态，离心时留在上清中;蛋白质与染色体DNA不变性而呈絮状，离心时可沉淀下来。

　　纯化质粒DNA的方法通常是利用了质粒DNA相对较小及共价闭环两个性质。例如，氯化铯-溴化乙锭梯度平衡离心、离子交换层析、凝胶过滤层析、聚乙二醇分级沉淀等方法，但这些方法相对昂贵或费时。对于小量制备的质粒DNA，经过苯酚、氯仿抽提，RNA酶消化和乙醇沉淀等简单步骤去除残余蛋白质和RNA，所得纯化的质粒DNA已可☉满足细菌转化、DNA片段的分离和酶切、常规亚克隆及探针标记等要求，故在分子生物学实验室中常用。