一、污染的清除
培养细胞一经污染，多数较难处理。如果污染细胞价值不大，宜弃之;有细胞株留存的或可购置的，可在寻找原因后彻底消毒操作室，复苏或重新购置细胞，再培养。若污染细胞价值较大，又难于重新得到，可采取以下办法清除。
(一)使用抗生素
抗生素对杀灭细菌较有效。联合用药比单独用药效果好。预防用药比污染后再用药效果好。预防用药一般用双抗生素(青霉素100u/mL加链霉素100μg/mL)，污染后清除用药需采用大于常用量5～10倍的冲洗法，于加药后作用24～48小时，再换常规培养液。此法在污染早期可能有效。所用抗生素品种除青霉素、链霉素外，还可用庆大霉素、卡那霉素、多粘菌素、四环素、制︼霉菌素等。常用400～800μg/mL卡那霉素或200μg/mL四环素♂处理，每隔2～3日换液1次，传1～2代进行治疗。近年来有报道，4-氟，2-羟基喹啉(Ciprofloxacin,Cip)、截耳素衍生物(Pleu-romutilinderivative,BM-Cyclin2:BM-1和四环素衍生物(BM-2)等三种抗生素单用或合用对杀灭支原体有效。这三种抗生素均用PBS配成250X浓缩液，-20℃保存备用，使用浓度Cip为10μg/mL，BM-1为10μg/mL，BM-2为5μg/mL。使用时先吸除污染的培养液，加入含BM-1的RPMI1640培养液，3天☆后再吸除培养液，加入含BM-2的RPMI1640培养液，培养4天，如此连续3个轮次，直至用33258荧光染色镜检证明已清除支原体后，再加正常培养液培养传代3-4次。
(二)加温处理
将污染的组织培养物放在41℃培养18小时，可杀死支原体，但对细胞有不良影响。所以在处理前要进行预试验，摸索能最大限度杀死支原体又对细胞影响最小的加热时间。此法有时不可靠。若〓先用药物处理后，再以41℃加温处理效果更佳。
(三)使用支原体特异性血清
用5%的兔支原体免疫血清(血凝效价1:320以上)可去除支原体污染，因特异抗体可抑制支原体生长，故经抗血清处理后11天即转为阴性，并且5个月后仍为↘阴性。但此法比较麻烦，不如用抗生素方便、经济。
(四)其他方法
除了上述去除污染的方法外，还有动物体内接种除菌法、巨噬细胞吞噬法、污染培养瓶中加溴尿嘧啶再用光照射的方法及√过滤法等，但均较麻烦，且效果不确定。所以一旦支原㊣ 体污染，除非有特别重要价值，一般均弃之重新培养。
二、污染的预防
预防是防止细胞培养过程中发生污染的最好办法。只有预防工作做在前，才能将发生污染的可能性降到最小程度。一般预防●可从以下几方面着手：
(一)从物品、用品消毒灭菌着手
细胞培养所用物品清洗、消毒要彻底，各种溶液灭菌除菌要仔细，并在无菌试验阴性后才能使用。操作室及剩余的无菌器材要定期清洁消毒灭菌︽ξ。
(二)从操作者做起
1、操作者责任心要强，要细〓心稳重，操作技术要熟练。进无菌室前要用肥皂洗手或用5%新洁尔灭浸泡5分钟，按规定穿隔离衣。进入后关好门，坐下来尽量少走动。工作开始要先ξ 用75%酒精棉球¤擦手、擦瓶口和烧灼瓶口。事先要严格检查器材、溶液和培养物，不要把污染品或未经消毒的物品带入无菌室内，更不能随便使用，以免造成大◥批污染。
2、操作者动作要轻，必须在火焰周围无菌区内打开瓶口，并将瓶口转动烧◇灼。操作时尽量不要谈话，若打喷嚏或咳嗽应转向背面。
3、操作时要常更换吸管，切勿↓一根吸管做到底。一旦发现吸管口接触了手和其他污染物品应弃去。实验完毕及▓时收拾，保持实验室清洁整齐，最后用消毒水浸泡的纱布擦台面。
(三)防止细胞交叉污染
在进行多种细胞培养操作时，所用器具要严格区分，最好做上标记便于辨别。并按顺序进行操作，避免一》起进行时易发生混乱。
在进行换液或传代操作时，注射器和滴管不要触及细胞培养瓶瓶口，以免把细Ψ 胞带到培养液中污染其他细胞。
所有细胞一旦购置，或从别处引入，或自己建立，均应及早留种冻存，一旦发生污染可弃之复苏，重新培养。
