在细胞复苏过程中，有多次复苏失败，最终在查阅了相关技术积累了足够的复苏技能后复苏成功，现将细胞复苏的操作程序和注意事项总结如下，望能为同行提供些参考。
【材料】
2. 培养液(DMEM)胎牛血清(CBS)二甲基亚砜(DMSO)
【操作程序】
1. 细胞实验室进行常规消毒，紫外照射40min以上。
2. 培养液(DMEM)、0.25%胰蛋白酶(Trypsin)恒温水浴箱370C预热20min，备用。
3. 二甲基亚砜(DMSO)在40C冰箱中冷藏30min，备用。
4. 从液∑氮保存罐中取出冻存管，立即放入400C水浴中，快速摇晃，直至冻存液完□ 全融化。
5. 将细胞悬液移入15ml离心管，缓慢加入4ml培养液，离心(1000r/min，5min)。
6. 用培养液悬液混悬沉淀细胞，调整细胞浓度，方培养箱中培养。
7. 记录复苏日期。
【注意事项】
1. 取细胞的过程中注意带好防冻手套▲，护目镜。此项尤为重要，细胞冻存管可能漏入液氮，解冻时冻存管中的气温急剧上升，可导致爆炸。
2. 冻存液的问题：冻存液的配置已是常识，在这里不作详述，但二甲基亚砜(DMSO)对细胞不是完全无毒↓副作用，在常温下，二甲基亚砜对细胞的毒〓副作较大，因此，必须在1-2min内使冻存液完全融化。如果复苏温度太慢，会造成细胞的损伤，二甲基亚砜(DMSO)最好选择进口产品。
3. 离心前须々加入少量培养液。细胞解冻后二甲基亚砜浓度较高，注意加入少量培养液可稀释其浓度，以减少对细胞的损伤。
4. 离心问题：目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养，第二天换液。因为离心的目的是两个，去除DMSO，去除死细胞，这个是↑标准流程，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间，转的不够活细胞沉底的少，细胞就全被扔掉了，转过了活细胞会受压过大◥，死亡。此外在操作过程中容易污染，所以不推荐〒。另一种说法为细胞悬液中含有二甲基亚砜(DMSO)，DMSO对细胞有一定的毒副作用，所以须将离心后的液体前倒净，且一定倒干净。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏，结果无有异常。
5. 细胞贴壁少的问题⌒：教科书中说明冻存细卐胞解冻时1ml细胞液要加10ml-15m培养液，而在我的试验中的经验总结为培养基越少细胞越容易贴附。
6. 复苏细胞分装的问题：试验中我的经验∩总结为复苏1管细胞一般可分装到1-2只培养瓶中，分装过多，细胞浓度过低，不利于细胞的贴壁。
7. 加培养基的量放入问题：这个量的多少的把握主要涉及到的问题是DMSO的浓度，从如果你加培养基的太少，那么DMSO的浓︼度就会比较大，就会影响细胞生长，从以前的资料来看，DMSO的浓度在小于0.5%的时候对一般细胞没有什么影响，还有一个说法是1%。所以如果你的冻存液的浓度是10%DMSO的话那么加10ml以上的培ζ养基就恰好稀释到了无害浓度。
