抗体保存与运输得当与否，直接决定了抗体的活性和使用效果!如果抗体保存得当，大部分抗体活性都可以维持数月甚至数年。
本指南以abcam抗体保存方法＠为主，同样也可以应用到其他绝大部分公司的抗体产品!
请谨记!无论何时请按照说明书推荐的保存条件正确保存抗体!
1. 收到抗体后请务必在12000rpm离心1分钟后再打开管盖进行分装和保存(如果抗体体积小于50ul，请延长离心时间至5分钟，以保证全部抗体均离心下来)!
Abcam的◤抗体使用非常特殊的储存管，只有在12000rpm离心1分钟才能将附着在管壁或】盖内的抗体全部离心下来。即使是在10000rpm离心也会导致离心不完全，导致出现抗体的量不足的现象!
2. 对于abcam大部分抗体，比较合适的保存方式是分装后保存在 -20oC or -80oC 。
o 对绝大多数抗体来说，保存在-20oC是完全足↓够了。没有任何证♀据显示保存在-80oC 会有更多的好处!
o 分装可以最大程度的降低ω反复冻融对抗体活性的损害，同时也降低了由于多次从同一管中吸取抗体造成的污染可能性。
o 分装的量以一次实验用完为好，最】少不能少于10ul每份。因为分装体积越小，抗体的浓度越可能会受到蒸发以及管壁吸①附的影响
o 复融后的分装抗体如果一次用不完，将剩余母液保存在4oC，避免再冻起来!
o 抗体工作液应该当天配制当天用完，在4oC 尽量不要超过1天。
o 绝对避免将抗体保存在自动除霜冰箱中。尽量将抗☉体保存在冰箱里层，而不是门上◤
3. 大部分抗体收到后4oC短暂保存1-2周对抗体活性是没有影响的。
如果抗体很快(1-2周)会使用，推荐在4oC保存，这是为了避免反复冻融对抗体活性的损害。如果要长期保存则最好是在-20oC or -80oC。最关键的一点是要根据说明书推荐的方式来正确的█保存抗体!
但是，腹水形式的产品请在收到后立即冻起来!因为该类产品含有大量的蛋白酶，长期在4oC保∴存会导致抗体的降解!
4. 大部分抗体的运输条件◣：一般的运输过程需要3-4周的时间，所以是在4oC的条件下来完成的。
4oC运输最主要的目的是为了避免反复冻融对抗体活性的损害(如果使用干冰运输，那么收到时抗体是冻起来的，为了分装就需ㄨ要解冻。这就多了一次冻融的过程)。所以运输过程中绝对避免干冰运输!
特殊抗体的保存条件：
· 酶联抗体：永远保存在4oC，避免冻起来。否则会导致酶活性的下降或者丧失
· 偶联抗体：所有偶联抗体都是在棕色管中或使用锡箔□ 纸避光保存。尤其是荧光抗体，对光极为敏感，因此在所有的实验阶段∑ 也是要避光操作的!
· IgG3的同型对照：永远保存在4oC，避免冻起来。因为如果出现冻融过程，该抗体非常容易形成多聚体
无论是保存还是运输，绝对避☆免反复冻融!
反复冻●融会导致抗体变性，导致多聚体形成，从而降低抗体的结合能力!
抗体保存其它相关信息
关于加入甘油保存：
有些人会加50%的甘油到抗体中来避免反复冻融，甘油在-20oC 会降低冰点。这对很多抗体可能是可行¤的。但是abcam仅对非常小的一部分抗体检测〓过其在这种条件下的稳定性;而abcam只对按照〖推荐条件保存的抗体提供质量保证!加入甘油的溶液不建议＠在-80oC保存，因为这已经超过了甘油的冰点。如果您要加入甘油来保存抗体的话，请谨慎注意无菌操作，避免污染!
关于蛋白保护剂：
蛋白在高浓度时更不容易降解(1 mg/ml 或者更高)，这就是为什么在抗体中加入BSA之类作为稳定剂的原♀因了;另一方面，加入的蛋白也可以减少抗体由于管壁吸附所造成的损失。但是如果抗体要用来标记的话，则不能加入蛋白稳定剂，因为这些稳定剂会和抗体一起竞争结合标记物。
关于叠氮化钠(sodium azide)的使用：
为了防止微◥生物污染，叠氮化钠经常被加入到抗体中(终浓度0.02% (w))。Abcam的很多抗体已经含有了0.02%-0.05%的叠氮♀化钠，在说明书的“Storage buffer”中有标明的。
在下述情况中不能使用叠氮化钠：
· 如果抗体用于染色或处理活细胞，用于体内研究：
叠氮化钠在抵抗微生物的同时，对其它大部分有机物【也是有毒的，因为它阻断≡了线粒体的cytochrome electron transport system.
· 要偶联带有氨基基团的抗体：
叠氮化钠会干扰任何含有氨基基团的偶联，因此在进行偶联之前，应将叠氮化钠去除。偶联后的抗体可以加入叠氮化钠保存，但是浓度只能是0.01%。对于㊣需要偶联的抗体，thimerosal (merthiolate)可以替代叠氮化钠作为保々护剂!
注：叠氮化钠的去除方式：
可以通过凝胶电泳或过滤的方式去除!IgG的分子◤量是150kDa (IgM 是~ 600kDa); 叠氮化钠的分子量只有65Da。使用cut off 14kDa的滤膜即可将叠氮化钠从抗体中去除
