表达蛋白的≡分离与纯化

大肠杆菌表达蛋白以可溶和不溶两种形※式存在，需要不同的纯化策略。现在，许多蛋白质正在被发现而事先并不知道它们的功能，这些自然需要将蛋白质分离出来后，进行进一步的研究来获得。

分ξ析蛋白质的方法学现已极大的简化和改进。必须承认，蛋白质纯化比起DNA 克隆〓和操作来是更具有艺术性的，尽管DNA 序列具有异乎寻常的多样性（因而它是唯一适合遗传物质的），但它却有标准的物理化学性质，而每♀一种蛋白质则有它自己的由氨基酸序列决定的物理化学性质（因☉而它具有执行众多生物学功能的用途）。正是蛋白质间的这些物理性质上的差异使它们得以能进行纯化，但这也意味着需要对每一种待纯化的蛋白质研发一套新的方法。所幸的是，尽管存在这种固有的困难，但现已有多种方法Ψ可以利用，蛋白质纯化策略也已实际可行。目前，待研究蛋白或酶的基因的∴获得已是相当普遍的事。可诱导表达系统特别是Studier 等发展的以噬菌体T7RNA 聚合酶为基础的表达系统的出现使人们能近↙乎常规地获得过表达（over-expression），表达水平可▓达细胞蛋白的2%以上，有些甚至高达50%。

一、可溶性产物的纯化

（一）试剂准备

采用T7· TagAffinity Purification Kit

1、T7·Tag 抗体琼脂

（二）操作步骤

1、100ml 含重组表达质粒的菌体诱导后，离心5000g×5min，弃上清，收获菌体，用10ml 预冷的B/W 缓冲液重悬。

2、重悬液于冰上超声处⌒理，直至样「品不再粘稠，4℃离心 14000g×30min，取上清液，0.45μm膜抽滤后作为样品液。

3、将结合T7·Tag 抗体的琼※脂充分悬起，平衡至室温Ψ，装入层析柱中。

4、B/W 缓冲液平衡后样品液过柱。

5、10ml B/W 缓冲液过柱，洗去未结合蛋白。

6、用5ml 洗脱缓冲液过柱▅，每次1ml，洗脱液用含150μl 中和缓冲液的离心管收集，混匀后置于冰上，直接SDS-PAGE 分析。

7、将洗脱下来的蛋白放入透析袋中，双蒸水★透析24hr，中间换液数ζ次。

8、用PEG 20000 浓缩蛋白。

（三）注意事项

蛋白在过层析柱前，要0.45μm 膜抽滤，否则几次纯△化后，柱子中会有不溶物。

二、包涵体的纯化

包涵体是外源基因在原核细胞中表达时，尤其在大肠杆菌中高效表达时，形成的〓由膜包裹的高密度、不溶性蛋白ω　质颗粒，在显微镜下观察时为高折射区，与胞质中其他成分有明显区别。包涵体形成是比较复杂的，与胞质内蛋白质生成速率有关，新生成的多肽浓度较☉高，无充足』的时间进行折叠，从而形成非结晶、无定形◆的蛋白质的聚集体；此外，包涵体的形成还被认为与宿主菌的培养条件，如培养基成分、温度、pH 值、离子强度等因素有关。细胞中的生物学活性蛋白质常以可融性或分子复合物的形式∴存在，功能性的︾蛋白质总是折叠成特定的三维结构型。包涵体内的蛋白是非折叠状态

的聚集体，不具有生物学活性，因此要获得具有生物学活性的蛋白质必须将包▓涵体溶解，释放出其中的蛋白∏质，并进行蛋白质的复性。包涵体的主要成分就是表达卐产物，其可占据集体蛋白的40%～95%，此外，还含有宿主菌的外膜蛋白、RNA 聚合酶、RNA、DNA、脂类及糖类物质，所以分离包涵体后，还要采用适※当的方法（如色谱法）进行重组蛋白质的▆纯化。

（一）试剂配制

1、缓冲液A：50 mmol/L Tris-HCl（pH8.0）,2 mmol/L EDTA,100 mmol/L NaCl。

2、缓冲液B：50 mmol/L Tris-HCl（pH8.0）,1 mmol/L EDTA,100 mmol/L NaCl，1%NP-40。

3．缓冲液Ⅰ：50 mmol/L Tris-HCl （pH8.0），2 mmol/L EDTA，100 mmol/L NaCl，0.5%TritonX-100(V/V)，4 mol/L 脲素。

4．缓冲液Ⅱ：50 mol/L Tris-HCl（pH8.0），2 mmol/L EDTA，100 mmol/L NaCl，3% Triton X-100 。

5．缓冲液Ⅲ：50 mmol/L Tris-HCl （pH8.0），2 mmol/L EDTA，100 mmol/L NaCl，0.5%Triton X-100，2M 盐酸胍。

6．缓冲液C：8 mol/L 脲素，10 mmol/Lβ-巯基乙醇，100 mmol/L Tris-HCl（pH8.0），2mmol/L EDTA及脱氧↑胆酸钠。

（二）操作步骤

1．用缓冲液A 漂洗菌体细胞（10ml/g）, 离心6000g×15min，收集菌体细胞，重复此步骤，将菌体细胞△再在缓冲液A 中洗涤一次。

2．将漂洗过的菌体细胞悬浮于缓冲液B中，超声破碎，镜检，破碎率⊙高于95%，离心1500g×30min，收集」包涵体沉淀。

3．将包涵体沉淀用缓冲液Ⅰ、缓冲液Ⅱ、缓冲液Ⅲ分别超声洗涤一次，1500g 离心收集包涵体沉淀。

4．包〖涵体的溶解：用含高浓度脲素№的缓冲液室温放置30min，然后离心1500g×30min，留上清。将溶解后的蛋白质适当稀释，磁力搅拌，透析过夜。