GMS150高精度气体调控系统
GMS150高精度气体调控系统可以将最多4种不同气体▲进行精确混合。每路输入气体的流量使用热式质量流量计精确测量，并由内置的质量流量控制器进行精准控制，输出的是完全混合的均质气体。气体输入输出使用Prestolok快速安全接头，保证使用过程中的便捷性与安全性。
GMS150高精度气体调控系统可用于二氧化碳、氮气、一氧化碳、甲烷、氨气以及其他气体的浓度控制。
GMS150高精度气体调控系统分为GMS150版和GMS150-MICRO版，其中GMS150版精度更高，GMS150-MICRO版可调控流速更大。
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应用领域：
? 与植物培养箱、光养生物反应器等联用，进行精确气体控制培养
? 模拟不同CO2浓度环境，研究温室效应对植物/藻类的影响
? 研究CO2浓度与光合作用∏的关系
? 模拟烟气等有害气体对植物/藻类的影响
? 研究植物/藻类对有害气体的处理与利用
技术参数：
? 测量原理：热式质量流量测量法
? 可调控气体：空气、氮气、二氧化碳、氧气、一氧化碳、甲烷、氨气等干燥纯净、无腐蚀性、无爆炸性气体，气源需用户自备
? 调控通道：标配为2通道，通道1为Air-N2，通道2为CO2，最多可扩展为4通道
? 工作温度：15-50℃
? 输入/输出接头：Parker Prestolok接头(6mm)
? 输入压力：3-5bar
? 密封：氟化橡胶
? 显示屏：8×21字符液晶显示屏
? 尺寸：37cm×28×15cm
? 供电：115-230V交流电
? 可联用仪器：FMT150藻类培∏养与在线监测系统、MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、FytoScope系列智能LED光源生长箱、用户自行设计的培养箱或反应器（可提供气路连接方案）等
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与FMT150藻类培养与在线监测系统联用的GMS150 | 与FytoScope智能LED光源生长箱联用的GMS150 |
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与中科院海洋所自行设计的培养装置联用的GMS150 | |
GMS150版调控参数：
? 最小流量范围：0.02-1 ml/min
? 最大流量范围：20-1000ml/min
? 可定制流量范围：可在最大流量和↑最小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 20-1000 ml/min；通道2(CO2): 0.4-20 ml/min；可调控CO2浓度0.04% - 100%（实际调控浓度与流量有关）
? 精度：±0.5%，加全量程±0.1%（3-5ml/min为全量程±1%，＜3ml/min为全量程±2%）
? 稳定性：<全量程±0.1%（参考1ml/min N2）
? 稳定时间：1~2s
? 预热时间：30min预热达到最佳精度，2min预热偏差±2%
? 温度灵敏度：<0.05%/℃
? 压力灵敏度：0.1%/bar（参考N2）
? 姿态灵敏度：1bar 压力」下与水平面保持90°最大误差0.2%（参考N2）
? 重量：7kg
GMS150-MICRO版调控参数：
? 最小流量范围：0.2 - 10 ml/min
? 最大流量范围：100 - 5000 ml/min
? 可定制流量范围：可在最大流量和最小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 40-2000 ml/min；通道2(CO2): 0.8-40 ml/min；可调控CO2浓度0.04% - 100%（实际调控浓度与流量有关）
? 精度：±1.5%，加全量程±0.5%
? 重复性：流量<20 ml/min为全量程±0.5%，流量>20 ml/min为实际流量±0.5%
? 稳定时间：1s
? 预热时间：30min预热达到最佳精度，2min预热偏差±2%
? 温度灵敏度：零点<0.01%/℃，满度<0.02%/℃
? 姿态灵敏度：1bar 压力下与水平面保持90°最大误差0.5 ml/min（参考N2）
? 重量：5kg
应用案例：
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与FMT150藻类培养与在线监测系统联用研究蓝藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代谢节律（Cerveny, 2013, PNAS）
产地：欧洲
参考文献：
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2. Suka?ová K, et al. 2019.Optimization of microalgal growth and cultivation parameters for increasing bioenergy potential: Case study using the oleaginous microalga Chlorella pyrenoidosa Chick (IPPAS C2). Algal Research40: 101519
3. Cordara A, et al. 2018. Analysis of the light intensity dependence of the growth of Synechocystis and of the light distribution in a photobioreactor energized by 635 nm light. PeerJ, 6:e5256, DOI 10.7717/peerj.5256
4. Cordara A, et al. 2018. Response of the thylakoid proteome of Synechocystis sp. PCC 6803 tophotohinibitory intensities of orange-red light. Plant physiology and biochemistry, 132: 524-534
5. Alphen P, et al. 2018.Increasing the Photoautotrophic Growth Rate of Synechocystis sp. PCC 6803 by Identifying the Limitations of Its Cultivation. Biotechnology Journal13(8):700764
6. Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769
7. Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902
8. Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids?Bioresource Technology, 235: 338-347
9. Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423
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