6分彩

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                LCpro T 全自〖动便携式光合仪

                LCpro T 全自动便①携式光合仪
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                • LCpro T 全自◇动便携式光合仪
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                LCpro T
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                详细说明

                ?LCpro T全自动便携式光合仪

                  LCpro-T便携式光合仪为新一代智能型↓便携式光合作用测定仪,用以测量植物叶片的光合速率、蒸腾速率、气孔导度等与植ㄨ物光合作用相关的参数。仪器应用时间差分IRGA(红外气体分析)CO2分析模块和双激光调谐快速〓响应水蒸气传感器精密测量叶片表面CO2浓度及水分的变化情况来考察叶片与植物光合作用相关的参数。通过人工光源、CO2控制单元和温度控制单元可以同时精确调控环境⊙条件,从而测定Ψ光强、CO2浓度和温度对植物光合系统的影响。本仪器可在高湿度、多尘等恶劣环境∴中使用,具有广泛的适用性。

                  LCpro T 全自动便携式光合仪LCpro T 全自动便携式光合仪

                  上图左为全套光合仪主机配件及便携箱等,上图中为光合仪主机和手←柄,上图右为操作【人员进行野外实验

                  应用领域

                  植物光合生理研究

                  植物抗胁迫研究

                  碳源碳汇研究→

                  植物对全球气候变化的相应及其机理

                  作物新♀品种筛选

                   

                  技术特点

                  配备手持式叶绿素荧光仪,内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序,包括两套荧光淬灭№分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP-test等

                  LCpro T 全自动便携式光合仪LCpro T 全自动便携式光合仪    彩色LCD触摸屏,屏幕和控制单元均采用膜封技※术,可在高湿和多尘环境下使用

                  白光和RGB光源可选

                  内置GPS模块,精确获取⊙经纬度及海拔数据

                  完全自动、独立控制环境参数▆(空气湿度,CO2浓度,温度,光照强度)

                  精确测量CO2和水蒸汽数据

                  便携式设计,体积轻小,仅重4.1Kg

                  人体工程学︾设计,舒适型肩带,携带操作非常简】便

                  叶室手柄内置微型IRGA,有效缩短CO2测量时间

                  LCpro T 全自动便携式光合仪LCpro T 全自动便携式光合仪    可在恶劣环境下操作,坚固耐用

                  可方便互换不同种类的叶室、叶夹

                  叶室材料精心选择,以确保CO2及水分的测¤量精度

                  数据存储量大,使用即插即拔@ 的SD卡

                  维护方便,叶室所有区域都很容易清洁

                  采用低能耗技术,野外单电池持续工作时间长,可达16小时

                  实时◤图形显示功能

                  LCpro T 全自动便携式光合仪

                  上图为英国剑桥大学植物科学系M. Davey博士在南极■洲对藻类光合作用研究时的工作图片,因LC系列光合仪轻便小〓巧,坚固耐用,续航持久等特点被列为首选。

                  技术指标

                  测量参数:光合速率、蒸腾速率、胞间CO2浓度、气孔导度、叶片温度、叶室温度、光合有效辐射、气压、GPS数据等,可进行光响应曲线和CO2响应ω曲线测量。

                  l 手持叶绿素荧光仪(选配)

                  1.       测量参数包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、RAR、Area、M0、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶︾绿素荧光参数,及3种给光程序的光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等

                  2.       高时间分辨①率,可达10万次每秒,自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP-test测量参数包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、M0、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi-D0、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TR0/RC、ET0/RC、DI0/RC等

                  CO2测量范围:0-3000ppm

                  CO2测量分辨率□ :1ppm

                  CO2采用红外分析,差分开路测量系统,自动置零,自动气压和温度补偿

                  H2O测量范围:0-75 mbar                                     

                  H2O测量分辨率:0.1mbar

                  PAR测量范围:0-3000 μmol m-2 s-1,余弦校正

                  叶室温度:-5 - 50℃   精度:±0.2℃

                  叶片温度:-5 - 50℃ 

                  空气泵流量:100 - 500ml / min

                  CO2控制:由内部CO2供应系统提→供,最高达2000ppm

                  H2O控制:可高于或低于环境条件

                  温度控制:由微型peltier元件控制,环境温度-10℃到 15℃,所有叶室自动调节

                  PAR控制:RGB光源最大2400μmol m-2 s-1,LED白色▂光源最大2500μmol m-2 s-1

                  可选配多种带有光源的可控温叶室、叶夹 

                  1.      宽叶叶室:长×宽为2.5×2.5cm,适用于阔叶及大多数叶片类型

                  2.      窄叶叶室:长×宽为5.8×1cm,适用宽↑度小于1cm的条形叶

                  3.      针叶叶室:长约69mm,直径47mm,适用于簇状针叶(白光光源)

                  4.      小型叶叶室:叶室直▲径为16.5mm,测量面积2.16cm2

                  5.      土壤呼吸/小型植△物室:测量测量土壤呼吸,或者高度低于55mm的整株草本植物光合作用,底面直径为11cm

                  6.      多功能测量室:长×宽×高为15×15×7cm,分为上下两部分,上部测量小型植物光合作用,下部分测←量土壤呼吸

                  7.      果实︼测量室:上下两部分组成,上部透明,下⌒ 部为金属,可测量果实最大直径为11cm,最大高度为10.5cm

                  8.      冠层测量室:底面直径12.7cm,高12.2cm,适用于地表冠层

                  9.      荧光仪联用适配器:适用于连接多种叶绿素荧光仪

                  LCpro T 全自动便携式光合仪  

                  上图从左到右依次为宽叶室、窄叶室、LED光源、荧光仪联用叶▼室、小型叶室

                  LCpro T 全自动便携式光合仪

                  上图从左到右依次为针叶室、果实测量室、土↓壤呼吸室、多功能测量室、冠层室

                  显示:彩色WQVGA LCD触摸屏

                  数据存储:SD卡,最大兼容32G容量

                  数据输出:Mini-B型USB接口,RS232九针D型标准接ㄨ口,最大230400波特率PC通讯

                  供电系统:内置12V 7.5AH锂离子电池,可持续工作至16小时,智能充电器

                  尺寸:主机230×110×170mm,测量手柄300×80×75mm

                  重量:主机4.1Kg,测量手柄0.8Kg

                  操作环境:5到45℃

                  典型应用

                  1. Glyphosate reduces shoot concentrations of mineral nutrients in glyphosate-resistant soybeans, Zobiole L. et al. 2010, Plant and Soil, 328(1): 57-69

                LCpro T 全自动便携式光合仪LCpro T 全自动便携式光合仪

                  本研√究对不同类型的抗草甘膦大豆进行草甘膦处理,发现大豆的各项光合参数,包括叶◥绿素含量、气孔导度、光合速率和蒸腾速率都有所降低。

                  2. Methanol as a signal triggering isoprenoid emissions and photosynthetic performance in Quercus ilex, Seco R. et al. 2011, Acta Physiologiae Plantarum, 33(6): 2413-2422

                  LCpro T 全自动便携式光合仪LCpro T 全自动便携式光合仪本研究设计◥了一个气室装置,用以研究常青栎(Quercus ilex)在ぷ剪去部分叶片(模拟啃食)和加入甲醇(模拟附近其他植物被啃食时释放的信号)时的生理变化,发现两种处理都提高了植物的净光合速率。

                  产地:英国

                  

                  选配技术方案

                  1)        与叶绿素荧光仪组成光合∞作用与叶绿素荧光测量系统

                  2)        与FluorCam联用组成光合作用与叶绿素荧ζ光成像测量系统∩

                  3)        可选配高光谱成像实现从单叶片①到复合冠层的光合作用时空变化研究

                  4)        可选配O2测量单元

                  5)        可选配红外热成像单元以分析气孔导度动态

                  6)        可选配PSI智能LED光源

                  7)        可选配FluorPen、SpectraPen、PlantPen等手持式植物(叶片)测量仪器,全面分析植物叶片生理生态

                  8)        可选配ECODRONE?无人机平台搭载高光谱和红外热成像传感器进行时空格局调查研究

                  参考文献(仅列出部分代表性文献)

                  1.        Al Kharusi L., Assaha D.V.M, Al-Yahyai R. and Yaish W.M. (2017). Screening of Date Palm (PhoenixdactyliferaL.) Cultivars for Salinity Tolerance. Forests 2017,8, 136;doi:10.3390/f8040136.

                  2.        Alsanius, B.W., Bergstrand, K-J., Hartmann, R., Gharaie, S., Wohanka, W., Dorais, M., Rosberg, A.K.(2017). Ornamental flowers in new light: Artificial lighting shapes the microbial phyllospherecommunity structure of greenhouse grown sunflowers (Helianthus annuus L.) ScientiaHorticulturae, Volume 216, Pages 234–247.

                  3.        Alvarado-Sanabria,O., Garcés-Varón, G. and Restrepo-Díaz, H. (2017). Physiological Response of Rice Seedlings (Oryza sativa L.) Subjected to Different Periods of Two NightTemperatures. Journal of Stress Physiology & Biochemistry, Vol. 13, No. 1, 2017, pp. 35-43.ISSN 1997-0838.

                  4.        Barros, R.E., Fari R.M., Tuffi Santos L.D., Azevedo A.M., Governici J.L. (2017). Physiological Response of Maize and Weeds in Coexistence. Plants Daninha 2017; v35:e017158134.

                  5.        Berenguer, H.D.P., Alves, A., Amaral, J. et al. (2017). Differential physiological performance of two Eucalyptus species and one hybrid under different imposed water availability scenarios.Trees https://doi.org/10.1007/s00468-017-1639-y.

                  6.        Borja, D., Gonzalez-Gonzalez Nerea Oliveira Isabel Gonzalez Isabel Canellas Hortensia Sixto (2017).Poplar biomass production in short rotation under irrigation: A case study in theMediterranean. Biomass and Bioenergy, 107, Dec 2017, 198-206.

                  7.        WF Dutra, YL Guerra, JPC Ramos, PD Fernandes 2018. Introgression of wild alleles into the tetraploid peanut crop to improve water use efficiency, earliness and yield(2018)- journals.plos.org

                  8.        Can Bradyrhizobium strains inoculation reduce water deficit effects on peanuts?(2018).DD Barbosa, SL Brito, PD Fernandes”– World Journal of”, 2018 ?C Springer

                  9.        EG de Sousa, TI da Silva, TJ Dias, DV Ribeiro (2018). Biological Fertilization as an Attenuation of Salinity Water on Beetroot (Beta vulgaris)(2018)- Journal of Agricultural, 2018 – ccsenet.org

                  10.    TC Alves, JPAR da Cunha, EM Lemes (2018). Physiological changes in sugarcane in function of air and ground application of fungicide for orange rust control. 2018- Bioscience Journal – seer.ufu.br

                  11.    FRM Abreu, B Dedicova, RP Vianello, AC Lanna (2018). Overexpression of a phospholipase (OsPLD|?1) for drought tolerance in upland rice (Oryza sativa L.)(2018) Protoplasma, 2018 ?C Springer

                  12.    B Correia, RD Hancock, J Amaral (2018).Combined drought and heat activates protective responses in Eucalyptus globulus that are not activated when subjected to drought or heat stress alone(2018) Frontiers in plant ”, 2018 – frontiersin.org

                  13.    C Ma, H Hu, L Jia, C Zhang, F Li (2018).Effects of Brackish Water Salinity on the Soil Salt and Water Movements and the Cotton Seedling Growth Under Film Hole Irrigation. 2018 Sustainable Development of Water”, ?C Springer

                  14.    P Zou, X Lu, C Jing, Y Yuan, Y Lu, C Zhang (2018). Low-Molecular-Weightt Polysaccharides FromPyropiayezoensis Enhance Tolerance of Wheat Seedlings (Triticum aestivum L.) to Salt Stress(2018 Frontiers in plant”, 2018 – frontiersin.org

                  15.    MEB Brito, LAA Soares, WS Soares Filho (2018). Emergence and morphophysiology of Sunki mandarin and other citrus genotypes seedlings under saline stress(2018)- Spanish Journal 2018 – revistas.inia.es

                  16.    LAA Soares, PD Fernandes, GS Lima (2018).Gas exchanges and production of coloured cotton irrigated with saline water at different phenological stages(2018)- RevistaCi??ncia”, 2018 –SciELOBrasil

                  17.    X Zhang, Y Fan, Y Jia, N Cui, L Zhao (2018).Effect of water deficit on photosynthetic characteristics, yield and water use efficiency in Shiranui citrus under drip irrigation(2018- Transactions of the, 2018 – ingentaconnect.com

                  18.    JES Ribeiro, AJS Barbosa, SF Lopes (2018). Seasonal variation in gas exchange by plants of Erythroxylumsimonis Plowman(2018)- Acta Botanica”, 2018 –SciELOBrasil

                  19.    TB de Oliveira, L de Azevedo Peixoto, PE Teodoro (2018). The number of measurements needed to obtain high reliability for traits related to enzymatic activities and photosynthetic compounds in soybean plants (2018)- PloS one, 2018 – journals.plos.org

                  20.    A Muthalagu, SJ Ankegowda, MF Peeran (2018).Effect of Natural Growth Enhancer on Growth, Physiological and Biochemical Attributes in Black Pepper (Piper nigrum L.)(2018)- researchgate.net

                  21.    W Zhang, XX Chen, YM Liu, DY Liu, YF Du (2018). The role of phosphorus supply in maximizing the leaf area, photosynthetic rate, coordinated to grain yield of summer maize(2018)- Field Crops ”, 2018 ?C Elsevier

                  22.    Carla Barradas, Glória Pinto, Barbara Correia, Cláudia Jesus, Artur Alves. (2019). Impact of Botryosphaeria, Diplodia and Neofusicoccum species on two Eucalyptus species and a hybrid: From pathogenicity to physiological performance. https://doi.org/10.1111/efp.12493

                  23.    Valéria F. de O. Sousa, Caciana C. Costa, Genilson L. Diniz, Jo?o B. dos Santos, Marinês P. Bomfim, Kilson P. Lopes. (2019). Growth and gas changes of melon seedlings submitted to water salinity. http://dx.doi.org/10.1590/1807-1929/agriambi.v23n2p90-96

                  24.    T.Chatzistathis, I.E.Papadakis, A.Papaioannou, O.Dichala, A.GiannakoulaS.Kostas, P.Tziachris (2019). Genotypic tolerance of two Punicagranatum L. cultivars (‘Wonderful’ and ‘Acco’) to serpentine stress. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.12.027

                  25.    Cícero F. de Sousa Alvarenga, Evandro M. da Silva, Reginaldo G. Nobre, Hans R. Gheyi, Geovani S. de Lima, Luderlandio de A. Silva. (2019).Morfofisiologia de aceroleirairrigada com águassalinas sob combina??es de doses de nitrogênio e potássio. https://doi.org/10.19084/RCA18215

                  


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              17. 蒸渗仪技术与地下生态
              18. 土壤呼吸与碳通量
              19. 土壤水测量研究
              20. 动物
              21. 动物呼吸代谢测量
              22. 动物行为观测分析
              23. 动物调查与监测
              24. 水生态与藻类
              25. 藻类叶绿素荧光成像
              26. 藻类培养与叶绿素荧光测...
              27. 水质分析与监测
              28. 藻类与水体富营养化监测
              29. 湿地与水环境
              30. 水体取样及其它
              31. 气候与环境
              32. 气象观测站
              33. 降雨与蒸散
              34. 小型环境因子数据采集器
              35. 地球科学
              36. LIBS激光诱导击穿元素分...
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