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                AquaPen手持式藻类↑荧光测量仪

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                AquaPen AP110
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                详细说明
                AquaPen手持式藻类荧光测量仪

                  AquaPen AP110手持式藻类荧光测量仪是一款用于快速、精确测量水体藻类与蓝藻叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。AquaPen有两种探头型号。AP110-C配备比色杯试管测量室,将要测量的水体、悬浊液或培养溶液采集到比色杯中进行测量,配备455nm蓝色和620nmLED红色光源,既可以测量叶绿素荧光,又可以测量680nm720nm光密度。AP110-P配备了浸入式光学探⌒ 头,可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量,也可测量大型藻类。

                  AquaPen 具备极高的敏感度,可检测最低0.5μg Chl/L的叶绿素∞荧光,可以检测浮游植物浓度极低的自然水体,可用于野外和实验①室测量。

                  AquaPen采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。

                  应用领域

                  藻类、蓝藻光合特性研究

                  水体藻类含量检测

                  光合突变体筛选与表型研究

                  生物和非生物胁迫的检测

                  藻类抗胁迫能力或者易感性研究

                  经济藻类育种、病害检测、长势与产量评估◇

                  教学

                  功能特点:

                AquaPen手持式藻类荧光测量仪

                  结构紧凑、便携性强,LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内,重量仅180g

                  功能强大,是叶绿素荧光技术的高端结晶产品,具备了大型荧光仪的所有功能,可以测量所有叶绿素 荧光参数

                  内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序,包括两套荧光淬灭分析程〖序、3套光响应曲线程序、OJIP–test等

                  高时间分辨率,可达10万次每秒,自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数

                  AquaPen两种探头型号:比色杯试管测量室,既可以测量叶绿素荧光,又可以测量680nm和720nm光密度;浸入式光学探头,可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量,也可测量大型藻类

                  FluorPen专业软件功能强大,可下载、展示叶绿素荧光①参数图表,也可以通』过软件直接控制仪器进行测量

                  具备无人值守自动监测功能

                  内置蓝牙与USB双通讯模块, GPS模块,输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表

                  配备多种叶夹型号:固定叶夹式(适用于大批量样品快速测量)、分离叶夹式(适用于暗适应测量)、开放叶夹式(适用于温室、培养箱进行监测)、用户定制式等

                  可选配野外自动监测式荧光仪,防水防尘设计

                  测量程序与功能

                  Ft:瞬时叶绿▲素荧光,暗适应完成后Ft=F0

                  QY:量子产额,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应状态)或ΦPSII (光适应状态)。

                  OJIP:快速荧光动力学曲线,用于研究植物暗适应后的快速荧光动态变化

                  NPQ:荧光淬灭动力学曲线,用于研究植物从↓暗适应到光适应状态的荧光淬灭变化过程。

                  LC:光响应曲线,用于研究植物对不同光强的荧光淬灭反应。

                  OD:光密度,反映♀藻类密度(限AP110-C)。

                  技术参数

                  测量参」数包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶绿素荧光参数,OD680OD720(限AP110-C)及3种给光程序的◤光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等

                  OJIP–test时间分辨率为10μs(每秒10万次),给出OJIP曲线和26个参数,包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC

                  测量程序:Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、LC1、LC2、LC3、OD(限AP110-C)、Multi无人值守自动监测

                  测量光:每测量脉ξ 冲0-0.09μmol(photons)/m2.s,0-100%可调

                  光化学光:0–1000μmol(photons)/m2.s,0-100%可调

                  饱和光:0–3000μmol(photons)/m2.s,0-100%可调

                  探头型号:AP110-C试管式、AP110-P探头式

                AquaPen手持式藻类荧光测量仪AquaPen手持式藻类荧光测量仪

                  光源:AP110-C:620nm红光和455nm蓝光测量叶绿素荧光,680nm和720nm红外光测量OD;AP110-P:455nm蓝光

                  试管容积(限AP110-C):4ml

                  叶绿素荧光检测限:0.5μg Chl/L

                  检测器:PIN光电二极管,667–750nm滤波器

                  尺寸大小:超便携,手机大小,165×65×55mm,重量仅290g

                  存贮:容量16Mb,可存储149000数据点

                  显示与操◇作:图形化显示,双键操作,待机8分钟︻自动关闭

                  供电:可充电锂电池,USB充电,连续工作48小时,低电报警

                  工作条件:0–55℃,0–95%相对湿度(无凝结水)

                  存贮条件:-10–60℃,0–95%相对湿度(无凝结水)

                  通讯方式:蓝牙 USB双通讯模式

                  GPS模块:内置

                  软件:FluorPen1.1专用软件,用于数据下载、分析和图表显示,输出Excel数据文件及荧光动力学曲线图,适用于Windows 7及更高操作□ 系统

                  操作软件与实验结果

                AquaPen手持式藻类荧光测量仪AquaPen手持式藻类荧光测量仪

                  ?

                  产地: 欧洲AquaPen手持式藻类荧光测量仪

                  参考文献

                  

                  1.       M Zhao, et al. 2019. Effects of dissolved organic matter from different sources on Microcystis aeruginosa growth and physiological characteristics. Ecotoxicology and Environmental Safety 176: 125-131

                  2.       L Yang, et al. 2019. Biotoxicity of water-soluble species in PM2.5 using Chlorella. Environmental Pollution 250: 914-921

                  3.       Y Li, et al. 2019. Darkness and low nighttime temperature modulate the growth and photosynthetic performance of Ulva prolifera under lower salinity. Marine Pollution Bulletin 146: 85-91

                  4.       P Ranadheer, et al. 2019. Non-lethal nitrate supplementation enhances photosystem II efficiency in mixotrophic microalgae towards the synthesis of proteins and lipids. Bioresource Technology 283: 373-377

                  5.       M Jiang, et al. 2019. Allelopathic effects of harmful algal extracts and exudates on biofilms on leaves of Vallisneria natans. Science of The Total Environment 655: 823-830

                  6.       PV Sijil, et al. 2019. Enhanced accumulation of alpha-linolenic acid rich lipids in indigenous freshwater microalga Desmodesmus sp.: The effect of low-temperature on nutrient replete, UV treated and nutrient stressed cultures. Bioresource Technology 273: 404-415

                  7.       W Noh, et al. 2019. The potential of a natural biopolymeric flocculant, ε-poly-l-lysine, for harvesting Chlorella ellipsoidea and its sustainability perspectives for cost and toxicity. Bioprocess and Biosystems Engineering 42(6): 971-978

                  8.       M Bao, et al. 2019. Different Photosynthetic Responses of Pyropia yezoensis to Ultraviolet Radiation Under Changing Temperature and Photosynthetic Active Radiation Regimes. Photochemistry and Photobiology, doi: 10.1111/php.13108

                  9.       G Konert, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.

                  10.   Z Zhu, et al. 2019. High copper and UVR synergistically reduce the photochemical activity in the marine diatom Skeletonema costatum. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology 192: 97-102

                  11.   X Chen, et al. 2018. The secretion of organics by living Microcystis under the dark/anoxic condition and its enhancing effect on nitrate removal. Chemosphere 196: 280-287

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                  13.   P Steinrücken, et al. 2018. Comparing EPA production and fatty acid profiles of three Phaeodactylum tricornutum strains under western Norwegian climate conditions. Algal Research 30: 11-22

                  14.   T Kieselbach, et al. 2018. Proteomic analysis of the phycobiliprotein antenna of the cryptophyte alga Guillardia theta cultured under different light intensities. Photosynthesis Research 135(1-3): 149-163

                  15.   SB Ouada, et al. 2018. Effect and removal of bisphenol A by two extremophilic microalgal strains (Chlorophyta). Journal of Applied Phycology 6: 1-12

                  

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