酵母基因组DNA快速提取试剂盒
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货号 |
规格 |
价格 |
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N1161 |
50次 |
555 |
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N1162 |
100次 |
990 |
产品组分
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组分 |
货号 |
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N1161 |
N1162 |
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消化缓冲液DS |
15 ml |
30 ml |
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裂解液MS |
20 ml |
40 ml |
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蛋白酶K |
1 ml |
2 ml |
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去蛋白液PS |
30 ml |
60 ml |
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漂洗液PE |
15 ml |
30 ml |
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纯化液TE |
5 ml |
10 ml |
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DNA纯化柱 |
50个 |
100个 |
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说明书 |
1份 |
1份 |
注：裂解液MS中含有变性剂，请不要直接接触皮肤。
漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释，即含75%乙醇。
需要购买的试剂
溶壁酶（东盛货号：N9031、N9032）。
保存条件
蛋白酶K于-20℃保存。
其余试剂置于室温（15-25℃）干燥条件下保存1年。
消化缓冲液DS和裂解液MS中如有沉淀，在55℃加热溶解，待恢复室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA纯化效率。
产品说明
本产品用于酵√母基因组DNA的小量提取。纯化原理是利用细胞裂解液裂解细胞释放基因组DNA，由硅胶膜柱可逆吸附基因组DNA，经蛋白酶消化、漂洗液清洗
除去蛋白质、脂质以∞及多糖等杂质后，用纯化液洗脱获得基因组DNA。本产品可从1-5×107的酵母细胞中提取到3-35 μg 超纯基因组
DNA（OD260/280 = 1.7-1.9）。
产品特点
产品用途
质量控制
纯化的基因组DNA质量通过限制性酶切和单拷基因的PCR扩增鉴定。
酵母基因组DNA提取流程图
图1 酵母基因组DNA纯化流程图
操作方法
1 向每只1.5 ml离心管中加入酵母细胞液1-5 ml（最多不超过5×107个细胞），12,000离心1min，尽量去除上清。
注：菌液较多时，可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中。
2 向〖菌体加入600 µl 1 M山梨醇溶液，200 U溶壁酶，漩涡振匀，30℃消化30min。
注：可根据收集菌体量的不同、菌种的差异，溶壁酶比活的不同，相应调整溶壁酶的用量及消化时间。
3 5,000 rpm离心8-10min，去上清，收集沉淀。向收集到的菌体沉淀中加入200 μl消化缓冲液DS，振荡混匀。
注：如需要去除RNA，可加入4 μl RNase A（100 mg/ml）溶液，震荡混匀，室温放置5min。
4 加入20μl蛋白酶K溶液和220μl裂解液MS，漩涡振荡器振荡混匀，直至形成均一的悬浮液。65℃温浴10min。溶液应变清亮，简短离心以去除管盖内壁的
水珠。
注：加入裂解液MS时可能会产生白色沉淀，一般65℃放置时会消失，不会影响后续实验。如溶液未变清亮，说明酵母细胞裂解不彻底，可能导致提取DNA量少和提取出的
DNA不纯。
如菌体超过1.5 ml，可适当延长温△浴时间。
5 加入220 μl无水乙醇，上下颠倒混匀。此时可能出现絮状沉淀。将溶液及絮状沉淀转移到№纯化柱中。12,000 rpm离心1min，弃滤液。
注：此时基因组DNA被吸附于DNA纯化柱中的硅№胶膜上。
6 加入500 μl去蛋白液PS。12,000 rpm离心1min，弃滤液。
注：此步骤的作用是将硅胶膜上吸附的蛋白、脂质、多糖等杂质洗脱，以获得高质量基因组DNA。
7 加入500 μl漂洗液PE。12,000 rpm离心1min，弃滤液。
注：漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释，即含75%乙醇。
8 加入500 μl漂洗液PE。12,000 rpm离心1min，弃滤液。
9 12,000 rpm离心3min，以彻底去除纯化柱中残留的液体。
注：此步骤的作用是去除残留乙醇，避免影响后续的酶促反应（PCR或酶切）。同时利于基因组DNA充分溶解。
10 将纯化柱置于新的1.5 ml离心管中。向纯化柱中央处，悬空加入30-100μl洗脱液TE。室温放置2min。于12,000 rpm离心2min，管底即为高纯度基因组DNA。
注：洗脱液TE可用去离子水代替，但其pH需为8.0-8.5。体积视质粒拷贝数多少、用户对质粒浓度要求而定。
对洗脱液TE 60℃预热，会提高基因组DNA的产量。
图2 酵母基因组DNA电泳图
注意事项
1 溶壁酶需要客户另行购买（东盛货号：N9031、N9032）。
2 应尽量使用新鲜的菌体，确保提取的基因组DNA不被降解。
3 在操作步骤4中，菌体应充分悬浮，不要残留菌块，避免影响溶菌效果。
4 在操作步骤5种，加入无水乙醇后，可能】会出现絮状沉淀，应将离心管内的溶液及絮状沉淀转移到纯化柱中，确保基因组DNA的得率。
5 基因组DNA需长期保存时，建议使用纯化⊙液TE。分装后保存于-20℃或-80℃。
基因组DNA的浓度及纯度检测
1 基因组DNA 片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA 片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
2 DNA 应在OD260 处有显＠ 著吸收峰， OD260 值为1 相当于大约50μg/ml 双链DNA、40 μg/ml 单链DNA。
3 OD260/280比值应为1.7–1.9，如果洗脱时不使用纯化液TE，而使用去离子水，比值会偏低，因为pH 值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。
