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                OS-5P+便携式脉◣冲调制叶绿素荧光仪

                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素ζ 荧光仪
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                OS-5P+
                北京澳作生态仪器有限【公司
                高教
                北京
                详细说明

                 

                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪
                OS-5p+采用的是独特的调制-饱和-脉冲技术,可选择性的原位测量叶绿素荧光,以此来检测植物光合作用的变化。OS-5p+的调制测量光足够低,可以只激发色素的本底荧光,而不引起植物任何的光合作用,这保证了基础荧光Fo的准确性。OS-5p+具有很高的灵敏度和选择性,即使在野外或实验室内很高的外部光强下,也可准确测定叶绿素荧光参数。因此,OS-5p+不但适合在条件可控的实验室内进行测量,还可在条件多变的自然环境中开展野外的试验研究。
                OS-5p+广泛应用于植物生理、生态、农学、园艺、浮游植物、生物技术等学科的叶绿素荧光相关研究,特别是在植物逆境生理研究中应用广泛,几乎可以测量』所有类型的植物胁迫
                 
                1  特点
                可测量几乎←所有类型的植物胁迫:
                OS-5p+通过Fo、Fm、Fv/Fm、Fod (or Fo’)、Fms (or Fm’)、qP、qN、NPQ、qE、qT、qI、Y 或ΔF/Fm’、以及 O、 J、 I、 P、 T等参数,测量绝大多数类型的植物胁迫。同时,OS-5p+独一无二的N-300N-200氮(硫)胁迫测与硫胁迫量单元,还可获得叶绿素含量的参数。
                更新的测量协议
                Vredenberg OJIP淬灭协议:使用高时间分辨率,测量与OJIP相关的NPQ

                 OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪
                叶绿体迁移测量
                Cazzaniga 2013和Dal’Osta 2014近期的文章表明,叶绿体迁移已经替代了在高光强水平下中间时间范围的荧光变化,之前该变化一直被认为是由于状态转换和严重的光抑制引起的「。OS5p+是市面上唯一可测量叶绿体迁移引起的荧光淬灭的仪器。
                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪

                更加可靠的测量精度保证
                创新的PAR叶夹采用独特的余弦校正技术,校正叶片朝向引起的误差;同时对传感器位置引起的误差、光谱的误差进行校正,相较于未校准的PAR传感器,测量结果更加准确。
                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪
                 
                高光强下荧光测量的校正
                多次饱和光【闪技术采用非常短的饱和脉冲和回归模型方法,可以获得无穷大光◆强下的荧光,对具有高光强照射历史的植物,进行Y(II)和ETR测量的校正,用户自行决定是否开启该功能。
                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪
                更广泛的〓可自动编程测量协议:
                所有测量均可通过仪器的内置程序自动完成,并且可根据实际需要,更改测量∏参数。
                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪

                • 更强大的功☉能

                氮(硫)胁迫测量单元:N-300或N-200,可获得叶绿素含量相关参数,用于◆氮胁迫测量。而且,N-300测量不受样品厚度、大小和形状的影响。
                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪
                 
                藻类荧光测量单元:独特的藻类测量单元,可以测量藻类荧※光。
                多步光化光测量:用于光曲线、快速光曲线测量,每步的参数可独立设定。
                2  组成
                标准配件: OS-5p+主机、光纤、暗适应▓叶夹、标准PAR叶夹、开放式叶夹、用户手册、1 GB MMC/SD存储卡、USB数据线、USB SD读卡器、便携箱。
                ?   可选配件: 快速氮胁迫测量单元(N-300或N-200)、藻类测量单元、PAR调节支架、三脚架。
                3  技术参数
                ?         测量和计算的参数:
                Y(II)或ΔF/Fm’YETRPARTFv /Fm Fv /Fo Fo FmFv Fms  FmFs FRLCrETRMAXIkIm
                Hendrickson Quenching with NPQ (standard)
                Y(NPQ)、 Y(NO)、 Y(II)、 NPQ、 F v /F m
                Kramer Quenching (standard)
                L 、Y(NPQ)、Y(NO)、Y(II)、F v /F m
                Puddle model parameters (standard)
                NPQ、q N、q P 、Y(II)、F v /F m
                Quenching relaxation protocol (standard)
                E、q T 、q I 以及 puddle model或Hendrickson model参数;
                OJIP - Vredenberg OJIP 淬灭协议;
                OJIP - Strasser 协议
                直接读出: OJIP、t100μs、t300μs (或K step)、tFm (or P or Fm )、 A (or area above the curve)、Mo  (RC/ABS)、PlABS  (performance index)、 Fo 、Fm、Fv 、Fv /Fm 、Fv /Fo;
                存储于数据文件内的Strasser OJIP参数:ABS/RC、TR o/RC、DIo /CS、ETo /RC、TRo /ABS、ETo /TRo、ETo /CS、RC/CSo 、RC/CSM、S、M、T。
                OJIP
                图形最多可有32条曲线重叠,每个数据文件最多可以存储32挑曲线Ψ 的数据,存储的数据文件可达1G。
                光源:  
                饱和强度:690nm 短波滤波片LED,12000μmols;
                调制光源:红色:660 LED,690nm短波滤波片;
                                    蓝色:450nm LED
                光化光源:3000μmols白色 LED;
                                    可选:用于OJIP的红色光化光源
                远红外光源:高于740nm
                ?         检测方法:脉冲调制式检测;
                ?         检测器与♀过滤器:PIN 光敏二⊙极管,具有700 ~ 750 nm 滤波片;
                ?         采样速率:每秒1到1000000 个点,根据测量阶段自动转换;
                ?         调制光调节:自动最优化调节调制光强,也可※采用手动调节;
                ?         Multi-flash可应用与所有光适应测量协议,用于校正Fm’,也可〖以手动关闭;
                ?         测量时间:从0.1s到12h可调;
                ?         存储量: 1 GByte 非破坏性闪存;
                ?         数据输出: USB、1 GB MMC/SD;
                ?         用户界面:菜单式触摸屏;
                ?         电源供给:可充电镍氢电池
                ?         电池使用时间:8h到12h连续测量
                ?         尺寸:17.8 cm x 14cm x 8.3cm
                ?         重量:1.36 kg
                4  产地:美国
                5  参考文献
                Brian Michael Leckie、C. Neal Stewart Jr. Agroin?ltration as a technique for rapid assays for evaluating candidate insect resistance transgenes in plants. Plant Cell Rep. 2011 (30): 325–334
                K Ghassemi-Golezani、M Taifeh-Noori、S Oustan、M Moghaddam、S Seyyed Rahmani. Physiological Performance of Soybean Cultivars Under Salinity Stress. Journal of Plant Physiology and Breeding. 2011、1(1): 1-7
                M.A. Sobrado. Leaf gas exchange and fluorescence of  two teosinte species: Zea mays ssp. parviglumis and Z. Diploperennis . Journal of Tropical Agriculture. 2011 49 (1-2) : 91-94.
                Xiaoqing Yu、Guihua Bai、Na Luo、Zhenbang Chen、Shuwei Liu、Jianxiu Liu、Scott E. Warnke、Yiwei Jiang. Association of simple sequence repeat (SSR) markers with submergence tolerance in diverse populations of perennial ryegrass. Plant Science. 2011 (180): 391–398.
                David A. Dalton、Cathleen Ma、Shreya Shrestha、Peter Kitin、Steven H. Strauss. Trade-offs between biomass growth and inducible biosynthesis of polyhydroxybutyrate in transgenic poplar . Plant Biotechnology Journal. 2011、(2011): 1–9
                Collin J. Preftakes、Jerome J. Schleier III 、Robert K. D. Peterson. Bystander Exposure to Ultra-Low-Volume Insecticide Applications Used for Adult Mosquito Management. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2011、(8): 2142-2152
                ……
                 

                 

                 

                OS-5P+便携式脉冲调制叶绿素荧光仪

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