FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统
FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统是一款高度灵活、应用●广泛的植物生理生态研究仪器，系统采用模块化结构，有四个LEDs光源版、CCD镜头、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成。两对LEDs光源版提供测量光、光化学光和饱和光闪，角度和高度可调；CCD镜头高度可调，且可灵活配置PSI特制高灵敏度CCD镜头或高分辨率镜头，还可装配第五个光源版√于镜头周边。标准配置（标准版）的最大成像面积为13×13 cm，大型版最大成像♀面积达20×20 cm。超大型成像平台版成像面积更高达35×35cm，这是目前世界上叶绿素荧光成像技术能达到的最大成像面积。既可对单个叶片进行叶绿素荧光成像，还可对整株植物进行叶绿素荧光成像，广泛应用于◥植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植〓物环境如土壤重金属污染响应与生物监测、植物抗性、作物育种等研究。
应用领域:
· 植物光合特性和代谢紊乱筛选
· 生物和非生物胁迫的检测▼
· 植物抗胁迫能力或者易感性研究
· 气孔非≡均一性研究
· 代谢混乱研究
· 长势与产量评估
· 植物——微生物交互作用研究
· 植物——原生动物交互作用研究
功能特点:
§ 模块化，配置灵活，可自由」安装更换光源板、自由调整光源角度和高度㊣、自由调整CCD镜头高度，方便被测植物←的处理、操作等
§ 可自由选配不同波长LEDs光源板，如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多色荧光成像试验测】量等
§ 成像面积大，大型版●成像面积达20×20cm，可对整株植物甚至多株植物█（如拟南芥等小型植物）进行实验成像分析
§ 高灵敏度CCD镜头，时间分辨率达50张每秒，快速捕捉叶绿素荧光瞬变
§ 可进行自动重复成像测量，可设置一个实⊙验程序（Protocols）自动循〒环成像测量，成像测量数据自动按时间日期存入计算机（带时间戳）
§ 带有Kautsky诱导效应、荧光淬Ψ 灭分析等各种通用实验程序（protocols），测量分析参数达50多个
§ 可选配TetraCam彩色∩成像模块，最大成像面积20×25cm，用于叶片或植物形态测量分析
§ 测量样品包〒括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等
§ 可选配氧气2D成像模块
技术参数：
§ 标准版成像面积达13×13cm，大型版成像面积达20×20cm，超大型成◣像平台版成像面积达35×35cm
§ 测量包括F0，F0’，Fs，Fm，Fm’，Fp，FtDn，FtLn，Fv，NPQ_Dn，NPQ_Ln，Qp_Dn，Qp_Ln，qN，QY，QY_Ln，PARabs，Rfd等50多个★叶绿素荧光参数
§ 高灵敏度CCD，时间分辨率可达每秒50张，720×560像素，可精确无时滞地捕捉荧光瞬变，高速快捷分析处理；可选配高分辨率镜◣头，最高分辨率达1392×1040像素，有效像素↘大小为6.45μm，高速USB 2.0 (480Mbits/sec)，可像素叠加〓（binning）以提高灵敏度（2×2，3×3，4×4）
§ 自动测量分析功能：可预设1个实验程序，系统可自动测量储存，数据文件自动按照时间↘命名
§ 配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序（protocols），包括Fv/Fm Protocol，Kautsky诱导效应Protocol，荧光淬灭分析Protocol，客户定制光响应曲线及PAR吸收成像测量等
§ 4个13×13cmLED光源板（大型版为20×20cm），双色光源（标准版为2红光+2白光，可选配2红光+2蓝光或其它波长光源组合），双色光〇化学光（Actinic light1和Actinic light2）
§ 标配Actinic1光强300μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强2000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪4000μmol(photons)/m2.s
§ 光源升级：Actinic1光强2000μmol(photons)/m2.s ，Actinic2光强3000μmol(photons)/m2.s，饱和光闪6000μmol(photons)/m2.s
§ 标配▃测量光为618nm红光，其它波段可选，持续时间10μs–100μs可调；
§ 远红光735nm（FAR）与630nm双色LEDs光源板与7位滤波轮，用于测量F0’及PARabs
§ 1对青色LEDs光源版（选配），光强3000μmol(photons)/m2.s，用于气孔功能▲测量研究
§ 氧气2D成像（选配）：可对植物组织如叶片、果实等表面氧气浓度分布二维成像，测量分析植物叶片等表面氧气浓度的时空分布变化
§ FluorCam叶绿素荧光成像分析软件，具Live（实况测试）、Protocol（实验程序选择）、Pre–processing（成∞像预处理）、Result（成像分析结果）等菜单
§ Protocol实验程序可自由编辑，用户也可利用Protocol菜单ξ中的向导程序模版自由创建新的实验程ζ 序
§ 成像预〓处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域（Region of interest，ROI），成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不同ROI的荧光参数列表等
§ 数据分析具ξ 备“信号计算再平均”模式（算数平◇均值）和“信号平均再计算模式”，在高信噪比的情况下选用“信号计算再平均”模式，在低信噪比的情况『下选择“信号平均再计算”模式以过滤掉噪音带来◇的误差
§ 给光制度：静态或动态（窦式）
§ CCD检测范围：400–1000nm，像素尺寸：8.2μm×8.4μm
§ A/D 转换分辨率：12位
§ 光谱响应：540nm处量子效率最高（70 %），400nm和650nm处转降50%
§ 读出噪音：低于12eRMS，典型10e
§ 满阱容量：大于70,000 e (unbinned)
§ Bios：固件可升级〓
§ 通讯方式：USB 2.0
§ 供电电压：90–240V
典型应用：
1. Chi W. et al. (2008): Plant Physiol. 147: 573-584.
拟南芥dg1缺陷性与野生型叶绿素荧光比较，dg1补偿后差异消失，确认叶绿》素荧光变化是由dg1缺陷造成的。
2. Miura E. et al. (2007): Plant Cell 19: 1313-1328.
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产地：欧洲
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不同植株Ψ 的强光敏感性
