流式细胞术(Flow cytometry，简称FCM)是20世纪70年代发展起来的一种对细胞的物理性质及化学性质，如细胞大小、内部结构、DNA、RNA、蛋白质、抗原等进行快速测定并可分类收集的技术。该技术超越了传ㄨ统显微分析技术，能在瞬间对大量细胞进行准确的分析。这种快速有效的细胞分析技术已广泛应用于细胞生物学、免疫学、发育生物学、细胞动力学、生理学、分子生物学等生物学研究的各个领域【--，在其基础上建立的流式细胞＠ 仪系统，具有体积小、功能全和使□　用方便等特点。本文简要介绍FCM 的原理，对其在高等植物研究中的应用作了综述。

　　1流式细胞术的原理

　　流式细胞术是一种∑　能够对液流中的细胞或其他微粒进行多参数快速分↘析和分选的技术。它的工

　　作原理是：在一定压力下，细胞随鞘液从样品池通过喷嘴中心进入照↑明室，通◆过激光束时使激光发生

　　散射和折射，由前向散射光(FSC，Forward scatter)和侧向散射光(ssc，Side scatter)检测器把☆散射光信

　　号转◎换成电信号，同时细胞所携带的荧光素被激发后所发出的荧光由聚光器收集。不同颜色的荧光被

　　双色反光镜转向不同的光电倍增管检测器，经放大后的荧光信号和散射光信号一起通过数据化处理，

　　再输入电脑储存并据此对细胞进行分析和分选t21。

　　流ζ式细胞术的主要特点是：

　　① 测量速度快，可在1 S内测定数万个细胞;

　　② 同时进行♀多参数测量，可以对同一个细胞做有关物理特性、化学〖特性的多参数测量，并具有明显的统计学意义;

　　③ 是一门综合性的高科技方法，它综合了激光技术、计算机技术、流体力学、细胞化学、图像技术等领域的知识和成果;

　　④ 既是细胞分卐析技术，又是精确的分选技术。

　　总之，流式细胞术主要包括了样品的液流技术、细▲胞的分选和计数技术，以及数据的采集和分析技术等♀。

　　2.细胞的参量和荧々光探针

　　FCM 是通过测量细胞的多种参量来获取信息的，细胞参数分为结构参量和功能参量两大类。结

　　构参量主要用于描述细胞的化学组分和形态特征，例如DNA、RNA的含量，总蛋白含量、胞内PH值

　　和细胞大小等;功能参量主要是描述细胞整体的理化和生物特性，如：细胞周期动力学、特殊配体※的鉴

　　定、特殊细胞的生物活性等，这些参量有的需要经荧光标记才能被测定，有的并不需要荧光标记[4]。

　　2.1参数测量的ぷ原理↓

　　流式细胞计进行多参数测量时，信息主要来自特异性荧光信号及非荧光散射信号。测量是在测量

　　区进行，所谓测量区就是照射激光束与喷出喷孔的液流束的垂直相交点。当液流中央的单个细胞通过▼

　　测量区时，受到激光照射会向立体角为2"tr的整个空间散射光线， 散射光的波长和入射光的波长相同。散射光的强度【及其空间分布与细胞的大小、形态、质膜和细胞≡内部结构密切相关，未遭受任何损坏的细胞对光线都具有特征性的散射，因此可利用不同的散射光信号对未经染色的活细胞进行分析和分选。经过固定和染色处理的细胞由于其光学性质的改变，散射光信号不同于活细胞。散射光不仅与作为散射中心的细胞参数相关，还跟散射角」及收集散射光线的立体角等非生物因素有关。

　　2.2细胞参数的测定

　　2.2.1 DNA和RNA含量

　　对DNA和RNA的测定及其含量的分析可以用多种荧光探针标记后测出。常用的荧光探针☉有吖啶橙(AO，Acridine—orange)、派洛宁Y(PY，I~yronineY)、HO(Hoechst)系列和色霉素A (CA )等。利用HO/CA 双染色还可分析DNA的碱基组成，另外还可以结合BrdU(Bromodeoxyuridine，溴脱氧尿嘧啶核苷)单克隆抗体免疫荧光】来测定细胞内DNA的合成。

　　2.2.2蛋白质总量

　　用FCM 可以测定细胞中蛋白的总含量，以检测一个细胞群体生长和代谢的状态，或区别具有不同蛋白含量的细胞亚群。检测总蛋白的常用荧光探针为异▆硫氰酸荧光素(FITC，Huorescein isothio—cyanate)，FITC以共价键与蛋白上带正电的残基结合，经蓝光激发后发出明亮的绿色荧光。

　　2.2.3特殊配体

　　配体是与不同的细胞结构特异性结合很强的各种大分子和小分子物〗质，通过对特异性荧光标记配体的测定可以获得不少有关结构参量和功能参量的信息。用于这方面工作的荧光探针主要有FITC、罗丹明系ω列(如四甲基异硫氰↓酸罗丹明TRITC、异硫氰酸罗丹明X-RITC和美国德州红等)、藻胆蛋白系列等。

　　2.2.4生物活性

　　生物活性的测定主要包括两方面：① 细胞本身的死活;② 活细胞生物功能发挥的强弱。FCM用来判断细胞死活的常用荧光探针有两大类：一类是能透过活细胞膜进入细胞内而发出荧光的物⌒　质，例如二√乙酸荧光素(FDA，Fluorescein diacetate)，它可被活细胞滞留而发出黄绿色荧光。若细胞有损伤则会从细胞中流失，观察不到荧光。另一类不能透过□　活细胞膜，但能对固定的细胞及』膜破损的细胞核进行染色，例如碘化丙啶(PI，Propidium iodide)和溴化乙锭(EB，Ethidium bromide)。

　　3流式细胞术在高等植物中的应用

　　3.1应用于植物中的特殊性

　　由于植物细胞与动物细胞在结构上的差异，例如植物细胞具有细胞壁、特殊细胞器以及中央液泡等，因此流式细胞术应◢用于植物细胞时，在样◆品制备、染色、仪器的改★造等方面都应适应植物细胞的上述特点。

　　3.1.1制备植物染色体悬液的材料

　　1984年De Laat和Blass用纤细单★冠菊(Happus gracilis)的悬液细胞第一次对植物染色体悬液进行流式计数分析，然而核型的不稳定性却成为流式细胞术应用于计数的最大障碍。随后ConiatS]等尝试着从幼叶原生质中分离出染色体进行分析，但由于细胞同步化程度■较低，这种方法没有得到广泛的应用。直到1992年Dolezelt9]~lJ用根尖分裂组织制备细胞悬液，由于大多数植物的∞根尖较易获得且其核¤型较稳定，因此利用根尖材料制备染色体悬〓液成为广泛使用的方法。

　　3.1.2细胞周期同步化和中期染色体富集

　　为了富集足量同步化的中期染色体，秋水仙碱常被用于抑制有丝分裂过程中纺缍丝的形成。但由于其对植物微管蛋白亲和力较低，需要使用较高的浓度，对人体会造成高毒性的危害以及在植物遗传上产生不稳定性。另外秋水仙碱也会导致染色体卐过于粘稠，不适用于染色体分拣等后续操作。1992年Dolezel等发现应用甲基氨草磷(APM’Apiprophos—methy1)、安磺灵(Oryzalin)、氟乐灵(Trifluralin)等人工除草剂代替秋水仙碱，在微摩级♀浓度时便可见显著的抗微管作用。

　　3.1.3染色体悬液的制备

　　由于植物细胞存在细胞壁，对染色体的分离造成了一定困难，通常有两种方法从同步化的细胞中释放染色体。其一，利用果胶酶和纤维素酶酶解细胞壁，然后将所获得的原生质体置于低渗缓冲液中，使得染色体得以释放;其二，将同步化根尖细胞经甲醛固定后进行机械分离从而释放染Ψ色体。相对而言，后者更加快█速，并且避免了长▲时间的酶解，减轻了对染色体的伤害。

　　3.1.4仪器的改造

　　由于植物细胞原生质体较大且脆弱，所以应使用100—200 Ixm孔径的喷嘴，还应降低鞘液的压力以保证通过喷孔的层流条件，并能够观察到液滴的形成，同时降低液滴▼形成的信号频率，以使直径大的液●流能准确的形成液滴。此外还需降低液滴偏转系统，以便观察液滴。

　　3.2在植物学研究中的应用

　　3.2.1细胞核分【析

　　FCM 在细胞核『分析方面的应用范围涉及DNA、RNA、蛋白质含量的分析、染色质结构分析、细胞周期分析、倍性分析等方面，是FCM在植物中应用最广泛、最＠基本的领域。Van’t Hof[ 0]用Hoechst33258荧光素对棉花(Gossypium hirsutum cv.MD5 1ne)纤维细胞进行染色后，以人类口腔上「皮细胞的细胞核DNA含量作为←标准对照，通过FCM 分析， 发现花期过后2 d的胚珠内DNA含量增加了24%。由于在细胞周期的各时相中，染色质的凝集程度不同，经酸或碱处理后，变性程度也不同，Rayburn等通过调整与DNA结合方式不同的两种染料的比例，经FCM 分析后◣确定玉米(Zea mays)中】异染色质的含量。通过流式细胞术对细胞周期ξ　变化情况进行分析，李涛等【 2]认为交变应力作用可直接影响烟草细胞或细胞◇分裂的同步化，促进S期的DNA合成，有助于细胞的有丝分裂。另外，Wan 等应用流式细胞术分别对经花粉培养和花药培养所获得的椰菜(Brassica oleracea)再生植株进行DNA含量分析，认为经花药培养所得到的植株更易发生染色体倍性变异。通过对野豌豆染色体倍♀性差异的分析，Kathleen等【 4】应用FCM 与根尖染色体压片法，对美国农业部国家种子保藏实验室的45个标记为长柔毛野豌豆(V&ia villosa)的标本进行鉴定，发现ω其中的两个标本应为褐毛野豌豆 pannonica)，充分说明流式细胞术在植物种质资源鉴定中快速而有效。由于FCM分析检测速度快，工作周期短，获得的信息量大，数据结果客观准确，统计学精度高，并且不使用放射性污染物质，现已成为细胞动力学研究和细胞周期分析的主要∞手段。

　　3.2.2原生质体√分析

　　FCM 在原生质体分︼析方面的应用主要测定原生质体大小、细胞壁生物合成、原□　生质体与微生物的相互作用、原生质体融合产物分选、被膜抗原的表达等。在植物细胞研究中主要应用于分选出活的原生质体，并通过分选出来的原生质体再生出植株，其中最有意义的就是选出●由原生质体融》合所产

　　生的异核体。采用流式细胞术，对酸橙(Citrus aurantium L.)叶肉原生质体和甜橙▅(C sineniscv.Shamouti)胚性愈伤组织原生质体◆电融合后再生的体细胞Ψ 杂种进行分析，结果表明，所有的体细胞杂种植株荧光强度是二倍体对照的两倍，这说明两者的原生质体已经融合。通过使用FCM 分析enod40转染的拟南芥属野生植物原生质体，Guzzo等发现导致前向角散射及细胞大小减少的基因有所表达，说明enod40对原生质体具有直接作用。用流式细胞术对荧光强度进行定量检测，还可以用来↑定位植物激素结合位点的空间分布，Yamazaki等用生物素化脱落酸(bioABA)来定位蚕豆气孔保卫细胞质膜的脱落酸感应位点，将位点用荧光素标记后，在保卫细胞原生质体表面可以观测到荧光微粒斑点，通过成像系统成功定位脱落酸结合位点的空间分布情况。

　　3.3-3染色体分析

　　1975年，Gray等【 B]从中国仓鼠细胞中分离出染色ㄨ体，用DNA荧光染料进╱行染色，根据染料含量的不同用流式细胞仪将单个染色体进行分拣，开创了流『式细胞遗传学。由于在染色体悬液的准备与单条染色体辨别方面存在着困难，利用流式细胞术分析与分选植物染色体一直未能取得预期的效果，但人

们发现使用转座系和缺失系可以将一些无法分离的染色体从复合峰中▓分离出来【 。1984年，De Laat和Blass~第一次报道了用流式细胞术识别和分拣植物染色体。随后流式细胞术被证明是一个非常有用的工具，它能快速精确地检测染色体数目和结构的畸变△∑　，以及非整倍体和染色体缺失。目前已在l7

　　个物种中利用流式细胞术对染色体进行分析与分选，包括玉米(Zea may cv.Seneca 60)、小麦(Triticumaestivum L.)、大麦(Hordeum vulgare L.)、黑麦(Secalecereale)tar231等。另外，Macas等 在1993年利用FCM对碗~_(Viciafaba L. 流式核Ψ型进行分拣，结合PCR技术对其DNA进█行物理定位， 成功实现了USP基因(unknown seed protein genes)、碗豆球蛋白基因(vicilin genes)和豆球蛋白毋基因(1egumin Bjgenes)、豆球蛋白 基因(1egumin B4 genes)、假基因(pseudogenes )在相应染色体区域上的定位。流式细胞术还可以分选出指定的↘染色体，用来建立◎染色体DNA 文库，但目前在『植物中仅有番茄(Lycopersicon pennellii)t~和蚕豆( 口L.) 染色体DNA文库的报道。李立家等已将流式细胞术↙和PCR技术相结合▼，应用于类玉米中抗病基⊙因类似物序列的研究。

　　4展望

　　从1930年Caspersson和Whorellt31以细胞的计数开始，试图寻找研究细胞的新工具，到1973年BD公司与美国斯坦福大学合作，研制开发并生产了世界上第一台商用流式细胞仪FACS I，流式细胞术进入了一个空前飞速发展的时代。进入九十年代后，流式细胞术作为一门生物检测技术已经日臻完善，仪器的硬件平台也已〖达到稳定的技术状态。科学家和仪器制造商又纷纷将研究的焦点转向荧光染料的开发、单克隆抗体←技术、细胞的制◥备方法以及提高电子信号的处理能力上来，以拓展日趋广泛的应用领域。

　　流式细胞术的强大生命力植根于生物学、医学的各个领域，正是々这些日新月异、变化多样的应用项目在全球范围内推动了流式细胞术的发展。目前，利用流式细胞术不但可以对植物细胞进行◣计数、测量＠ 基因组大小、还能分析细胞周期、进行流式核型(染色体的DNA含量)分析、分拣染色体以及构建染色体文库等。由于FCM分选系统可提供纯度较高的特异性细胞群，因此利用↑流式细胞术分检纯化出的染色体在分子生物学后续研究领域有着广阔的应用前景，例如利用PCR技术进行物理图谱的绘制、FISH与PRINS遗传↓图谱的绘制、植物基因组的分♀析、染色体蛋白的免疫定位[27-3o]等。

　　近年来，FCM作为一种日渐成熟的技术， 已经深入到植物研究的诸多领域，给工农业╳生产和科学研究提供了一个强有力的工具。但是，这种技术还有一些自身的缺点，如价格昂贵、对操作人员要求高以及样品需要复杂的前处理等，这都限制了流式细胞术在植物领域中的应用。然而，随着新型多功能流式细胞仪的研制、多参数分析技术的建立以及各种分析软件的开发，我们相信流式细胞术作为一种不断完善的技术在植物学研究中将↘有更加广阔的应用前景。