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                如何改善RNA提取质量

                教育装备采购网 2014-10-23 09:19 围观1141次

                  1. 在收获组织及细胞死亡之后,应立即灭活内源的RNA酶,以防止RNA降解。

                  以下3个方法均可有效使内源RNA酶失活:

                  (1)用含离液(如胍盐)的细胞裂解↘液收获样品,并立即匀浆。

                  (2)用液氮瞬间冻结样品。值得特别注意的是:组织块必须保证足够小,在浸入液氮的瞬间就ξ能冻结,以确保⌒ 瞬间令RNA酶失活

                  (3)立即将样品置于RNAlater? Tissue Collection:RNA Stabilization Solution中。它是一种水相、无毒的收集试剂,能立即稳定并保护完整、未冻结的组织和细胞□ 样品中的RNA。关键〗要点是组织样品切片一定要够薄(<0.5 cm),这样RNAlater才能在RNase破坏RNA之前迅速渗入组织块中。

                  2. 使用正确的细胞或组织储△存条件

                  在样品用液氮瞬间冻结之后,应该储存在-80°C,千万不能解冻。即使是置于含有胍盐的裂解液中作匀浆前的短暂解冻,也会导致RNA的降解◎和损失。瞬】间冻结的组织应该首先在超低温条件下先研磨成粉,然后置于裂解液中进行匀浆。

                  RNAlater使样品储存更为便利。储存在RNAlater中的细胞或组织可在室温下稳定保存长达1个星期,在4°C可】稳定保存长达1个月,或永久保存在〓-20°C。

                  3. 彻底匀浆样品

                  细胞或组织∩的彻底匀浆对RNA提取来说,是︽一个很关键的步骤,它能够防止RNA的损失和降解。匀浆的方法应根据细胞或组织的类型来选择。大部分培养的细胞可以置于细胞裂解液中,通过简单的涡旋震荡来匀浆◥;而动物∩组织、植物组织、酵母和细菌则常常需要更加剧烈的方法。比如说细菌的细胞壁,就需要酶消化来实现彻底的细胞裂解和RNA的最大回收。

                  4. 在RNA提取之前预处理样█品裂解液

                  对于某些样品来说,在匀浆之后,RNA提取之前,还需要一些额外的处理步骤◥。对于脂肪含量高的组织,像脑组织和脂肪组织得到的裂解液,就需要通过氯仿抽提来去除脂类,从而提高RNA产量。许多植物组织中富含多酚和多糖,会降低RNA的质量和产量,用Plant RNA Isolation Aid 预处理裂解液可去除这≡些难以处理的成分。

                  5. 选择最好的RNA分离方法

                  现有众多的◣RNA分离方法也许令人难以取舍。目前最简单也是最安全的方法是柱式分离,如RNAqueous或RNAqueous-4PCR Kit。因为操作简单,所以这些步骤特别适用于同时处理多个样品。如果是∮处理复杂的组织,如富含核酸酶︻(胰腺)或脂肪(脑和脂肪》组织)的样品,就推荐使→用更加严格的、基于酚处理的RNA分离方法。

                  6. DNase处理

                  如果提取的RNA将用于RT-PCR,我们推荐用DNase处理纯□ 化的RNA样品以去除残留的DNA污染。当样品◢来源于富含DNA的组织,如脾脏时,DNase处理也是一个△好办法。Ambion的RNAqueous-4PCR Kit的实验流程中包含了DNase处理的步骤,并提供了必需的试剂(DNA酶I)。DNA-free DNase treatment & Removal Reagents 则可用于去除用各种方法制备的RNA样品中的DNA污染。这两个产品都提供了高质╳量的DNase I,优化的●反应缓冲液,和DNA酶消化处理后简单快速去除DNase的方法,无需使用有机溶剂和热处ξ理。

                  7. 减少环境RNase的暴露

                  为了得到完整的、高品质RNA,在整个RNA制备过程中,当RNA离开强蛋白变性剂(如离¤液裂解液或酚)的保护时,避免引入新的RNase污染就非常关♂键。由于RNase几乎是无所不在,所以必须确保与纯化的RNA接触的每一样东西都是无RNase污染的。所有的表面,包括移液器、工作台、玻璃器皿和制胶设备,都必须用表面去污净化溶液如RNaseZap或RNaseZap Wipes 来处理过。必须保证一直使用♀无RNase的枪头、试管和溶液,手套也应经常更换。

                  8. 正确的『沉淀

                  纯化得到的RNA可能需要通过沉淀来浓缩,以满足一些下游应用的需要。醋酸铵(NH4OAc) 沉淀(加0.1体积的5 M 醋酸铵、2~2.5体积的无水乙醇,-20°C放置25分钟以上)可以很好地回收RNA。如果需要定量↘回收低浓度的RNA(ng/ml),可以采用共沉淀(如糖原glycogen、酵母yeast RNA或linear acrylamide)的方法。当RNA用于RT-PCR分析时,线性的丙烯酰胺和DNase处理的糖原都可以作为理想的共沉淀剂,因为它们都不含DNA污染。酵母RNA和未处理的糖原会给样品带来核酸污染,有∑可能影响RT-PCR的结果。沉淀后,注意避免RNA沉淀过≡分干燥,因为这可能导致很难重新溶解。

                  9. 重悬

                  许多RNA提取步「骤的最后一步是溶解纯化的RNA沉淀。理想的重悬溶液应该满足3点要求:无RNase污染、较低的pH值(pH 6-7)、含有螯合剂,以保护RNA不受带入的RNase的降解。(THE RNA Storage Solution能满㊣足以上所有标准)为了帮助溶解,RNA沉淀可置于重悬溶液←中在65°C孵育5分钟,并不时轻摇以帮助【溶解。

                  10. 储存

                  如果只是短期储存,重悬的RNA应放置于-20°C;如果是长期储存的话,就应该放置于-80°C。尽管重悬于水或缓冲液中的RNA也可以储存●在-80°C,但保№存于醋酸铵/乙醇溶液中的RNA沉淀则更加稳╲定。我们推荐将RNA溶液分装在几支管中。这会避免反复冻融损伤RNA,并预防偶然的RNase污染。

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