本方法有多种用途，主要包括：
从琼脂糖凝胶中分离纯化DNA片段;
从DNA反应物中纯化目的DNA片段，如回收纯化PCR产物、酶切连接反应中的DNA片段;
从探针制备反应物中去除未标记上的核苷酸以及小的DNA片段(比如引物);
DNA浓缩、去盐及去除杂质。
本试剂盒的主要成分“基因纯”试剂是无毒、无味、无腐蚀作用的白色颗粒，能专一性¤结合0.2kb到50kb大小的DNA(双链或单链，线性、环状或超螺旋)，不结合RNA、蛋白质、寡聚核苷酸、有机溶剂、去污剂及其它可能抑制酶活性的有机或无机物。
一、使☆用本法回收DNA片段有以下优点：
高纯度：回收的DNA片段基■本上不含RNA、蛋白质及其它有机分子，可直接用于酶切、连接、探针制备、序列测定等;
简便：所需主要仪器是一架台式离心机;
快速：整个回收过程只需半个小时;
高效：回收得率达到70%以上;
多用途：可以同时作胶※回收、PCR产物回收、DNA片段及探针的纯化浓缩等;
安全：不接触苯酚、氯仿等有害物质。
二、试剂盒组成
1.碘化钠溶液： 50ml
2.DNA洗涤液(20倍浓缩液)：10ml
3.“基因纯”试剂： 1ml
4.超纯水： 1ml
使用前，将DNA洗涤浓缩液(10ml)倒入一玻璃瓶中，加140ml无水乙醇及50ml蒸馏水(由使用者自配)，混匀后置于-20℃冰箱中，其余溶液置于4℃冰箱。
三、操作步骤
从琼脂糖凝胶中分离纯化DNA片段
a. 常规DNA电泳。按常规方法用溴化乙锭(EB)染色DNA，而后将欲分离的DNA带从胶上切割下来，置于一1.5ml离心管中。
b. 称出凝胶带的重量，加入三倍量(V/W)的碘化钠溶液。(如0.1g凝胶中加入0.3ml碘化钠溶液)。
c. 置于55℃水浴5-10分钟，直至凝★胶完全溶化。
d. 加入20ul充分混匀的“基因纯”试剂(建议使用前用漩涡振荡器振荡3分钟)，室温放置5分钟(期间不时将管子颠倒几次以混匀)。
e. 离心10秒(10,000rpm)，倒去上清液。
f. 加0.8ml刚从冰箱中取出的DNA洗涤液，充分摇匀，离心10秒，去上清。
g. 重复步骤f两次(共洗涤三次ξ)。
h. 用吸水纸仔细将管壁上及管底残留的洗涤液吸干。
i. 加入20ul超纯水，混匀后置于55℃水浴5分钟。
j. 离心3分钟，将上清液小心吸至另一个离心管，即为纯化的DNA。可直接用于酶切、亚克隆、PCR、标记、探针制备、序列测定、细胞转染等。
注意事项：
溴化乙锭染色后◥的DNA易受紫外光ζ 破坏，故尽量放置于暗室，切带时应♀使用长波长紫外灯，切胶时间尽量短。
DNA洗涤液应保持在低温，否则可能使DNA从“基因纯”试剂上脱落而导『致回收率降低。
步骤h是另一关键，管壁和管底残留的洗涤液若不□完全除去，可能导致“基因纯”试剂上结◇合的DNA无法由蒸馏水洗脱。
PCR反应物中纯化目的DNA片段
PCR反应完毕后，加蒸馏水至100ul(最后体积)。
加入300ul碘化钠溶液，混匀。
以下︽步骤与“从琼脂糖凝胶中分离纯化DNA片段”中步骤d到j相同。
从探针制备反应中除去未标记上的核苷酸及小的DNA片段
探针制备反应完毕后，加蒸馏水至100ul(最后体积)。
加入300ul碘化钠溶液，混匀。
以下步╳骤与“从琼脂糖凝胶中分离纯化DNA片段”中步骤d到j相同。
DNA浓缩，去盐及去除杂质
加入3倍量的碘化钠溶液于样品DNA溶液中(若DNA为固态，则先将之溶于适量水或TE中，再加3倍体积的碘化钠溶液)。
加20ul或更多的“基因纯”试剂(每ul该试剂可吸附0.3ugDNA，操作者可根据这一指标自行决定“基因纯”试剂的用量，但不应少于10ul)。
以下步骤与“从琼脂糖凝胶中分离纯化DNA片段”中步骤d到j相同。
