EMSA凝胶迁移 (Electrophoretic mobility shift assay)
实验原理
凝胶迁移或电泳迁移率实验(EMSA)是一种研究DNA结合蛋白和其相关的DNA结合序列相互作用的技术，可用于定性和定量分析。这一技术最初用于研究DNA结合蛋白，目前已用于研究RNA结合蛋白和特定的RNA序列的相互作用。
通常将纯化的蛋白和细胞粗提液和32P同位素标记的DNA或RNA探针一同保温，在非变性的聚丙烯凝胶电泳上，分离复合物和非结合的探针。DNA-复合物或RNA-复合物比非结合的探针移动得慢。同位素标记的探针依研究的结合蛋白的不同，可是双链或者是单链。当检测如转录々调控因子一类的DNA结合蛋白，可用纯化蛋白，部分纯化蛋白，或核细胞抽提液。在检测RNA结合蛋白时，依据目的RNA结合蛋白的位置，可用◤纯化或部分纯化的蛋白，也可用核或胞质细胞抽提液。竞争实验中采用含蛋白结合序列的DNA或RNA片段和寡核苷酸片段(特异)，和其它非相关的片段(非特异)，来确定DNA或RNA结合蛋白的特异性。在竞争的特异和非特异片段的存在下，依据复合物的特点和强度来确定特异结合。
实验试剂
重要试剂：
Boitin-N4-CTP (invitrogen # 15918-18)
TdT (NEB # M0252L)
Poly(dI.dC) (sigma #P4929)
Hybond-N 尼龙膜 (Amersham #RPN303B)
发光底物 (宁波 唯奥)
缓冲液：
Buffer A (store at 4℃)
Hepes (pH7.9) 10mM
KCl 10mM
EDTA 0.1mM
DTT(fresh added) 1mM
PMSF(fresh added) 0.5mM
Buffer B (store at 4℃)
0.5M EDTA in PBS (pH7.4)
Buffer C (store at 4℃)
Hepes (pH7.9) 20mM
NaCl 0.4M
EDTA 1mM
DTT(fresh added) 1mM
PMSF(fresh added) 1mM
Buffer I (store at RT)
Tris (pH7.5) 0.1M
NaCl 1M
MgCl2 2mM
Buffer II (pH7.5) (store at RT)
马来酸 100mM
NaCl 150mM
Buffer III (store at RT)
Tris(pH9.5) 100mM
NaCl 100mM
MgCl2 50mM
Blocking Buffer (store at 4℃)
0.3%Tween-20, 0.3%Triton X-100, 5%BSA in Buffer I
Wash Buffer
0.3%Tween-20 in Buffer II
20×SSC (1L pH7.0)
NaCl 175.3g
柠檬酸钠 88.2g
10×Binding Buffer (store at -20℃) [在公司(碧云天)购买：5×binding buffer,内含Poly(dI.dC)]
Tris (pH7.5) 0.1M
KCl 0.5M
DTT 10Mm
Poly(dI.dC) (store at -20℃)
1mg/ml in TE (pH7.5)
SA-HRP(储存液store at -20℃ 工作液store at 4℃)
1mg/ml in 50%PBS (pH7.2) 50%Glycerin
5×TBE (5L)
EDTA 18.612g
硼酸 139.1175g
Tris 272.565g
5×TdT Reaction Buffer (store at -20℃) (pH7.2)
Sodium cacodylate 0.5M
CoCl2 10mM
TCEP 1mM
Biotin-N4-CTP (store at -20℃)
Biotin-N4-CTP 50mM
Tris (pH7.5) 10mM
EDTA 1mM
实验步骤
生物素标记探针:
1. 按如下顺序加入反应物，温和混匀，切勿涡漩
超纯水 25μl
5×TdT Reaction Buffer 10μl
探针(1μM) 5μl
Biotin-N4-CTP 5μl
TdT (2U/μl) 5μl
37℃反应30分钟
2. 加入2.5μl 0.2M EDTA终止反应;
3. 加入50μl 酚：氯仿，短暂涡漩，15000g离心2min，保□留上层水相，-20℃保存;
4. 结合反应前等体积混合两条标记引物，90℃退火引物，并自然冷却至4℃，待用。
抽提核蛋白：
1. 2~3×106密度铺60mm细胞培养板，培养约12h;
2. 移去细胞培养基，PBS洗细胞一次;
3. 加入1mL Buffer B 于培养板，将细胞刮下收集于1.5mL离心管;
4. 1000g 离心2min，吸去上清;
5. 加入160μl Buffer A，重悬沉淀，冰育20min;
6. 加入含2.5%NP-40的Buffer A，涡漩10s，4℃ 15000g 离心5min;
7. 吸去上清，加入40μl Buffer C，4℃涡漩25min，4℃ 18000g 离心5min;
8. 吸取2μl上清采用Bradford法测蛋白质浓度，其余储存于-80℃。
配置非变性聚丙烯酰胺凝胶(以6%浓度为例)
5×TBE 1mL
30%Ac-Bi 2mL
40%Glycerin(甘油) 625μL
DDW (双蒸水) 6.125mL
10%AP 150μL
10%TEMED 100μL
以预冷为4℃的0.5×TBE为电泳缓冲液，100V预电泳30-60min(时间不定，跑到溴酚蓝占整块胶的三分之二处)
EMSA(参考PIERCE公司试剂盒)
1. 特异性的证明
首次使用的探针序列需证明其是否与目的蛋白特异性结合，确定目的条带№的位置。
按照“步骤”中的体系，做以下四组平行结合实验：
(在加入ddw，10×binding buffer，Poly(dI.dC)的基础上)
1) 生物素标记的探针
2) 蛋白质粗提物
3) 蛋白质粗提物+200倍浓度的非标记的同种探针(即冷探针)
4) 蛋白质粗提物+200倍浓度的「非标记的突变探针(可以设计多种突变类型的探针，看是否能竞争结合)
5) 蛋白质粗提物+抗体
室温反应10min，然后加入生物素标记的探针;
室温继续反应20min，做EMSA检测。
结果分析，如果出现如下实验结〖果
1) 显示游离探针位置
2) 显示游离探针位置和迁移带位置
3) 只有』游离带，没有迁移带
4) 和2)带型一致
则证明探针与目的蛋白为特异性结合。
步骤：
1. 按如下顺序加入反应物，温和混匀(20μl体系)
ddw ――
10×binding buffer 2μl
Poly(dI.dC) 1μl (以上文字已说明由公司定)
核蛋白粗提物 4-10μg(温和混匀)
生物素标记的探针 0.5μl
室温反应20min，加入6×Loading Buffer (TAKARA) 4μl，上样10-20μl，100V电泳至溴酚蓝于三分之二⌒ 处。
2. 电转前将尼龙膜浸泡于0.5×TBE至少10min
以预冷的0.5×TBE为电转缓冲液100V转胶于尼龙膜上，45min。
3. UV BOX下，以贴近膜一面面向紫外光源，以254nm激发光交联15min(紫外交■联仪1200能量，照2次)
4. 加入25mLBlocking Buffer，以约70rpm在脱色摇床上封闭30min
5. 将SA-HRP以1:30000-50000稀释于12mL Blocking Buffer，脱色摇床70rpm作用20min
(洗膜过程全部在脱色摇床上进行, 约100-140prm)
6. Buffer II 25ml, 5min
7. wash buffer 25ml 15min
8. Buffer III 25ml 5min×2次
9. 0.1%SDS in 2×SSC, 5min×2次
10. 0.1%SDS in 1×SSC, 10min×2次
11. 0.1%SDS in 0.5×SSC, 5min×2次
12. 将膜于滤纸稍适吸干，加入到以1:20稀释的发光反应▽液(宁波奥唯)，作用1-5 min，将尼龙膜封于保鲜膜中(避免褶皱和气泡的产生)，暗室曝光1-5min，检测信号。
注意事项
使用此protocol效果图
图1. 用10ng/ml的mLT-?刺激MEF细胞，分别刺激0、15、30、60、120min，检测NF-?B的量。(p：probe only. 只加入标记探针未加入核蛋白抽提物)
